Ви є тут

Антибіотикорезистентність ізолятів Staphylococcus spp. та Streptococcus spp., що спричиняють мастит на молочних фермах України

Мастити – найбільш поширена патологія корів, що завдає значних економічних збитків молочним господарствам. Часто збудниками маститу слугує група інфекційно асоційованих збудників, що можуть передаватися між тваринами. Здебільшого патологічний процес у субклінічно та клінічно хворих тварин спричиняє кокова грампозитивна мікрофлора. Значною проблемою є механізми набуття мікроорганізмами стійкості до одного або декількох антибактеріальних засобів. У зв’язку з цим стандартні схеми лікування, що застосовують у господарстві, стають недієвими. В публікації наведені результати вивчення стійкості до антибіотиків 45 ізолятів Staphylococcus spp. та 22 ізолятів Streptococcus spp. У дослідженні були використані хромогенні середовища CHROMagarTM Mastitis, CHROMagarTM Orientation та CHROMagarTM MH Orientation, що допомогло прискорити ізоляцію та ідентифікацію культур. Фенотиповий профіль стійкості да антибіотиків визначали за допомогою методу дифузії в агар. Staphylococcus aureus та коагулазонегативні Staphylococcus (CoNS) виявляли високий рівень стійкості до беталактамів пеніцилінового класу бензилпеніциліну – 60 та 66,7 %. Streptococcus disgalactiae та Streptococcus agalactiae виявляли високу стійкість до тетрацикліну – 46,7 і 35,3 %. Зокрема Streptococcus agalactiae мав високу стійкість до кліндаміцину – 35,3 %, Streptococcus disgalactiae до бензилпеніциліну – 29,4 %, Streptococus uberis до кліндаміцину – 75 %. Найменшу стійкість проявляли до антибіотика ванкоміцину – 6,7 % виділених стафілококів та 13,3 % стрептококів. MAR індекс більше 0,2 мали 75 % Streptococus uberis, 60 % CoNS та 52,9 % Streptococcus agalactiae. Більше 50 % всіх досліджуваних ізолятів мали множинну стійкість до антибіотиків, що найчастіше застосовують у господарствах України.

Ключові слова: Streptococcus spp., Staphylococcus spp., антибіотикостійкість, мастити, інфекційні мастити, грампозитивні бактерії.

  1. Majumder S., Jung D., Ronholm J., George S. Prevalence and mechanisms of antibiotic resistance in Escherichia coli isolated from mastitic dairy cattle in Canada, BMC Microbiol. 2021. Vol. 21. no. 1. 222 p. DOI:10.1186/s12866 -021-02280-5.
  2. Antimicrobial resistance and genetic characterization of coagulase-negative staphylococci from bovine mastitis milk samples in Korea / S.-J. Kim et al. J. Dairy Sci. 2019. Vol. 102. no. 12. P. 11439– 11448. DOI:10.3168/jds.2019-17028.
  3. Persson Y., J. Nyman A.-K., GrönlundAndersson U. Etiology and antimicrobial susceptibility of udder pathogens from cases of subclinical mastitis in dairy cows in Sweden, Acta Vet. Scand. 2011. Vol. 53. no. 1. 36 p. DOI:10.1186/ 1751-0147-53-36.
  4. Herd-level association between antimicrobial use and antimicrobial resistance in bovine mastitis Staphylococcus aureus isolates on Canadian dairy farms / V. Saini et al. J. Dairy Sci. 2012. Vol. 95. no. 4. P. 1921–1929. DOI:10.3168/jds. 2011-5065.
  5. The Two-Track Investigation of Fibronectin Binding Protein A of Staphylococcus aureus from Bovine Mastitis as a Potential Candidate for Immunodiagnosis: A Pilot Study/ A. Dobrut et al. Int. J. Mol. Sci. 2023. Vol. 24. no. 7. 6569 p. DOI:10.3390/ ijms24076569.
  6. Invited review: Selective treatment of clinical mastitis in dairy cattle / E. De Jong et al. J. Dairy Sci. 2023. DOI:10.3168/jds.2022-22826.
  7. Krömker V., Leimbach S. Mastitis treatmentReduction in antibiotic usage in dairy cows, Reprod. Domest. Anim. 2017. Vol. 52. P. 21–29. DOI:10. 1111/ rda.13032.
  8. McDougall S., Hussein H., Petrovski K. Antimicrobial resistance in Staphylococcus aureus, Streptococcus uberis and Streptococcus dysgalactiae from dairy cows with mastitis, N. Z. Vet. J. 2014. Vol. 62. no. 2. P. 68–76. DOI:10.1080/ 00480169.2013.843135.
  9. Oliver S.P., Murinda S.E. Antimicrobial Resistance of Mastitis Pathogens, Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 2012. Vol. 28. no. 2. P. 165–185. DOI:10.1016/j.cvfa.2012.03.005.
  10. Antimicrobial susceptibility of udder pathogens from cases of acute clinical mastitis in dairy cows / B. Bengtsson et al. Vet. Microbiol. Vol. 136. no. 1–2. 2009. P. 142–149. DOI:10.1016/j. vetmic.2008.10.024.
  11. Чемеровська І.О., Рубленко І.О. Проблема антибіотикорезистентності мікроорганізмів в Україні та світі. Науковий вісник ветеринарної медицини. 2022. № 2. С. 33–41. DOI:10.33245/2310-4902- 2022-176-2-33-41
  12. Sandhu R., Dahiya S., Sayal P. Evaluation of multiple antibiotic resistance (MAR) index and Doxycycline susceptibility of Acinetobacter species among inpatients, Indian J. Microbiol. Res. 2016. Vol. 3. no. 3. 299 p. DOI:10.5958/ 2394-5478.2016.00064.9.
  13. EUCAST Disk Diffusion Test Methodology. URL: https://www. eucast.org/ast_of_bacteria/disk_diffusion_methodology (Date of application 15.05.2023)
  14. CHROMagar™ Orientation Instructions for Use. URL: https://www. chromagar.com/product/chromagar-orientation/ (Date of application 15.05.2023)
  15. CHROMagar™ MH Orientation Instructions for Use. URL: https://www.chromagar.com/en/product/chromagar-mh-orientation/ (Date of application 15.05.2023)
  16. Granja B.M., Fidelis C.E., Garcia B.L.N., dos Santos M.V. Evaluation of chromogenic culture media for rapid identification of microorganisms isolated from cows with clinical and subclinical mastitis. J. Dairy Sci. 2021. Vol. 104. no. 8. P. 9115–9129. DOI:10.3168/ jds.2020-19513.
  17. Cobirka M., Tancin V., Slama P. Epidemiology and Classification of Mastitis, Animals. 2020. Vol. 10. no. 12. 2212 p. DOI:10.3390/ani10122212.
  18. Гаркавенко Т.О., Козицька Т.Г. Механізм резистентності та методи виявлення метицилінрезистентного стафілокока (MRSA) (оглядова стаття). Ветеринарна Біотехнологія. 2016. Т. 28. С. 42–54.
  19. Isolation and Identification of MethicillinResistant Staphylococcus aureus (MRSA) from Milk in Shire Dairy Farms, Tigray, Ethiopia / W. Girmay et al. Vet. Med. Int. 2020. Vol. 2020. P. 1–7. DOI:10.1155/2020/8833973.
  20. Антибіотикорезистентність мікроорганізмів: механізми розвитку й шляхи запобігання / М.В. Бондар та ін. Медицина невідкладних станів. 2022. № (3.74). С. 11–17. DOI:10.22141/ 2224- 0586.3.74.2016.76136.
  21. Molecular characterization of Staphylococcus aureus strains in bovine mastitis milk in Bangladesh/ M.N. Hoque et al. Int. J. Vet. Sci. Med. 2018. Vol. 6. no. 1. P. 53–60. DOI:10.1016/j.ijvsm.2018.03.008.
  22. Prevalence of methicillin-resistant Staphylococcus aureus and pattern of antimicrobial resistance in mastitis milk of cattle in Chitwan, Nepal / A. Shrestha et al. BMC Vet. Res. 2021. Vol. 17. no. 1. 239 p. DOI:10.1186/s12917-021-02942-6.
  23. Phenotypic and genotypic characterization of antimicrobial resistance profiles in Streptococcus dysgalactiae isolated from bovine clinical mastitis in 5 provinces of China / S. Zhang et al. J. Dairy Sci. 2018. Vol. 101. no. 4. P. 3344–3355. DOI:10.3168/jds.2017-14031.
  24. Pascu C., Herman V., Iancu I., Costinar L. Etiology of Mastitis and Antimicrobial Resistance in Dairy Cattle Farms in the Western Part of Romania, Antibiotics. 2022. Vol. 11. no. 1. 57 p. DOI:10.3390/ antibiotics11010057.
  25. Holko I., Tančin V., Vršková M., Tvarožková K. Prevalence and antimicrobial susceptibility of udder pathogens isolated from dairy cows in Slovakia. J. Dairy Res. 2019. Vol. 86. no. 4. P. 436–439. DOI:10.1017/ S0022029919000694.
  26. Antimicrobial resistance in bacteria isolated from mastitis in dairy cattle in France 2006–2016 / C. Boireau et al. J. Dairy Sci. 2018. Vol. 101. no. 10. P. 9451–9462. DOI:10.3168/jds.2018-14835.
  27. Identification and antimicrobial susceptibility of milk pathogen isolated from dairy production systems, Prev. / S. Kuhnen et al. Vet. Med. 2021. Vol. 194. 105451 p. DOI:10.1016/j.prevetmed.2021.105451.
ДолученняРозмір
PDF icon shevchenko_andriichuk_1_2023.pdf1.28 МБ