Ви є тут

Головна » Науковий вісник ветеринарної медицини № 2'2021

Фармакокінетичні показники тилмікозину фосфату в організмі здорових курчат-бройлерів

У статті наведено результати досліджень надходження, розподілу та виведення тилмікозину фосфату (діюча речовина препарату Тилмокс 25 %) з організму здорових курчат-бройлерів кросу КОББ-500 за перорального застосування. Встановлено швидке всмоктування з травного тракту птиці тилмікозину фосфату та надходження його у внутрішні органи. Максимальний вміст тилмікозину фосфату виявляли у легенях та печінці через 2 год від початку застосування препарату Тилмокс 25 %, який становив: 17,02±0,24 та 12,78±0,22 мкг/г відповідно, тимчасом у нирках через 26 год – 8,25±0,19 мкг/г, у грудних та серцевому м’язах через 52 год – 6,19±0,28 та 5,23±0,39 мкг/г відповідно. За випоювання здоровим курчатам-бройлерам препарату Тилмокс 25 % не встановлено здатності до матеріальної кумуляції тилмікозину фосфату, оскільки його вміст у внутрішніх органах та м’язах птиці не залежав від тривалості застосування препарату. Найвищий вміст тилмікозину фосфату впродовж 96 год випоювання курчатам-бройлерам препарату Тилмокс 25 % виявляли у легенях, що засвідчує про його концентрування у цьому органі. Розподіл тилмікозину фосфату в максимальних кількостях у легенях має важливе значення за локалізації збудників інфекційних захворювань у легенях птиці та для лікування хворих на респіраторні захворювання різної етіології. Припинення застосування препарату Тилмокс 25 % супроводжувалося суттєвим зменшенням вмісту його діючої речовини – тилмікозину фосфату у досліджуваних органах. Зокрема, через 24 год після припинення застосування препарату Тилмокс 25 % (на 120 год досліду), вміст тилмікозину фосфату у легенях був меншим в 1,9 рази, у печінці – 1,6 рази, нирках – 1,4 рази, грудних м’язах – 1,7 рази, серцевому м’язу – 1,3 рази, порівняно з показниками на 96 год. Через 5 діб після припинення випоювання курчатам-бройлерам препарату Тилмокс 25 % (на 216 год досліду), залишкові кількості тилмікозину фосфату у досліджуваних органах становили: у легенях – 1,20±0,03 мкг/г; печінці – 1,01±0,02 мкг/г; нирках – 0,91±0,03. Найменший вміст тилмікозину фосфату, у цей період досліджень, виявляли лише в одній із трьох проб серцевого м’язу – 0,02 мкг/г, тимчасом у грудних м’язах його не спостерігали. У подальшому буде досліджено вплив застосування препарату Тилмокс 25 % на організм дорослої птиці.

Ключові слова: Тилмокс 25 %, органи, розподіл, накопичення, виведення, фармакокінетика.

 

ДУХНИЦЬКИЙ В.Б. https://orcid.org/0000-0002-9670-1244


СОКОЛЮК В.М. https://orcid.org/0000-0003-2311-1910


ТИШКІВСЬКА А.М. https://orcid.org/0000-0003-4419-2174


ТИШКІВСЬКИЙ М.Я. https://orcid.org/0000-0003-0826-5276


ЛІГОМІНА І.П. https://orcid.org/0000-0001-8569-9487


  1. Creemer L.C., Beier R. C., Kjehl D. E. Facile Synthesis of Tilmicosin and Tylosin Related Haptens for Use as Protein Conjugates. The journal of antibiotics. 2003. Vol. 56 (5). P. 481–487. DOI:10.7164/ antibiotics.56.481
  2. Rasheed M. A., Ashraf M., Javeed A. Toxicological evaluation of tilmicosin after intramuscular injection in broiler chicken. The Journal of Animal & Plant Sciences. 2018. Vol. 28 (6). P. 1678–1686. URL: thejaps.org.pk/ doks/v-28-06/19.pdf
  3. Pharmacokinetics and Tissue Residues of Tilmicosin in Normal and Experimentally Mycoplasma Gallisepticum-Infected Broiler Chickens/A. Elkomy et al. Benha veterinary medical journal [Special issue for the 6 th scientific international conference]. 2018. Vol. 34 (3). P 188–205. DOI:10.21608/ BVMJ.2018.44745
  4. Synthesis and antimicrobial evaluation of 20-deoxo-20-(3,5-dimethylpiperidin-1) desmycosin (tilmicosin, EL-870) and related cyclic amino derivatives/M. Debono et al. J. Antibiot. (Tokyo). 1989. Vol. 42 (8). P. 1253–1267. DOI:10.7164/antibiotics.42.1253
  5. Dimitrova D., Georgiev K., Tsoneva D. Pharmacokinetics of tilmicosin in broiler chickens after single oral application. Institute of Mountain Animal Stockbreeding and Agriculture, Troyan Bulgaria. 2012. Vol. 15. No. (1). P. 1–12. URL:agris.fao.org/agris-search/search.do? recordID=BG2012000468
  6. Xu S., Dieter A. Tilmicosin. Addendum to the monographs prepared by the 47th meeting of the Committee. FAO Food and Nutrition Paper. 2008. 41 (9). P. 2–37. URL:fileadmin/user_ upload/vetdrug/docs/6-2009-tilmicosin.pdf
  7. Dimitrova D., Petkov P., Tsoneva D. Pharmacokinetics of tilmicosin in calves after single subcutaneous application. Agri. Sci. & technol. 2012. Vol. 4 (3). P. 211–214. URL:researchgate.net/ publication/262047971_Pharmacokinetics_of_tilmicosin_in_calves_after_single_subcutaneous_application
  8. Efficacy of intramammary tilmicosin and risk factors for cure of Pharmacokinetics and Tissue Residues of Tilmicosin in Normal and Experimentally Mycoplasma Gallisepticum-Infected Broiler Chickens Staphylococcus aureus infection in the dry period/R.T. Dingwell et al. J. Dairy Sci. 2003. Vol. 86 (1). P. 159–168. DOI:10.3168/jds.S0022-0302(03)73596-6.
  9. Elbadawy M., Aboubakr M. Pharmacokinetics, tissue residues of tilmicosin phosphate (tilmicoral®) and it's in vitro and in vivo evaluation for the control of Mycoplasma gallisepticum infection in broiler chickens. Int. J. Pharmacol. Toxicol. 2017. Vol. 5 (1). P. 11–16. DOI:10.14419/ijpt.v5i1.7084
  10. Comparison of pharmacokinetics of tilmicosin in healthy pigs and pigs experimentally infected with Actinobacillus pleuropneumoniae/J. Xiong et al. New Zealand Veterinary Journal. 2019. Vol. 67 (5). P. 257–263. DOI:10.1080/00480169.2019.1633434
  11. Pharmacokinetic and Pharmacodynamic Integration and Resistance Analysis of Tilmicosin Against Mycoplasma gallisepticum in an In Vitro Dynamic Model/Z. Huang et al. Experimental pharmacology and drug discovery. 2019. 492. P. 187–197. DOI:10.1080/00480169.2019.1633434
  12. Elsayed M., Elkomy A., Aboubakr M., Morad M. Tissue residues, hematological and biochemical effects of tilmicosin in broiler chicken. Vet. Med. Int. 2014. Р. 1–6. DOI:10.1155/2014/502872
  13. Jordan F.T.W., Forrester C.A., Hodge A., Reeve-Johonson L.G. The comparison of an aqueous preparation of tilmicosin with tylosin in the treatment of Mycoplasma gallisepticum infection of turkey poults. Avian Dis. 1999. Vol. 43 (3). P. 521–525. PMID:10494422
  14. Abu-Basha E. A., Idkaidek N. M., Al-Shunnaq A. F. Pharmacokinetics of tilmicosin (provitil powder and pulmotil liquid ac) oral formulations in chickens. Veterinary Research Communications. 2007. Vol. 31 (4). P. 477–485. DOI:10.1007/s11259-006-3543-6
  15. Dispositions kinetics, in vitro plasma protein binding, and tissue residues of tilmicosin in healthy and experimentally (CRD) infected broiler chickens/T. Attia et al. International Journal of Basic & Clinical Pharmacology. 2018. Vol. 7 (11). P. 2201–2208. DOI:10.18203/2319-2003.ijbcp20184328
  16. Кеles O., Bakirel T., Sener S. Pharmacokinetics and tissue levels of tilmicosin in fows. Tur J Vete Ani Sci. Turkicsh Journal of Veterinary and Fnimals Sciences. 2001. Vol. 25. P. 629–34. URL:journal. tubitak.gov/veterinary/issues/vet-01-25-4/vet-25-4-30-0010-17.pdf
  17. Pharmacokinetics of Tilvasolin alone or in combination with Vitamin E in broiler chickens/ F.I.A. El-Ela et al. Asian Jornal of Animal and Veterinari Advances. 2015. Vol. 10 (10). P. 556–566. DOI:10. 3923/ajava.2015.556.566
  18. Keles O., Bakirel T., Sener S. Pharmacokinetics and tissue levels of tilmicosin in fowls. Turk. J. Vet. Anim. Sci. 2001. Vol. 25 (4). P. 629–634. PMID: 8790882
  19. Kleven S.H. Summary of discussion of avian mycoplasma team, IRPCM, IOM. Avian Pathol. 1990. Vol. 19. P. 795–800. PMID: 9454912
  20. Horie M., Takegami H., Toya K., Nakazawa H. Determination of macrolide antibiotics in meat and fish by liquid chromatography–electrospray mass spectrometry. Analytica Chimica Acta. 2003. Vol. 44 (3). P. 150–154. DOI:10.3358/shokueishi.44.150.
ДолученняРозмір
PDF icon dukhnitsky_2_2021.pdf596.27 КБ
Науковий вісник ветеринарної медицини № 2'2021