Ви є тут

Надходження та розподіл доксицикліну в організмі курчат-бройлерів

У статті наведено результати досліджень надходження, розподілу та виведення антибіотика Польодоксин (діюча речовина доксицикліну гіклакт) з організму здорових курчат-бройлерів кросу КООБ-500 за перорального застосування. Дослідженнями встановлено швидке всмоктування доксицикліну гіклакту з травного каналу птиці у кров та надходження його у внутрішні органи. Максимальний вміст доксицикліну гіклакту було виявлено через 2–4 год від початку застосування польодоксину, який становив: у печінці – 9,07±0,07 мкг/г; легенях – 8,39±0,20 мкг/г; серці – 4,24±0,09 мкг/г; грудних м’язах – 4,28±0,23 мкг/г. Лише у нирках максимальний його вміст був через 12 год і становив 7,63±0,38 мкг/г. За випоювання клінічно здоровим курчатам-бройлерам розчину польодоксину не встановлено здатності до матеріальної кумуляції доксицикліну гіклакту (діюча речовина), адже його вміст у внутрішніх органах та м’язах птиці не залежав від тривалості застосування препарату. Дослідженнями встановлено відсутність органної приналежності доксицикліну гіклакту, тому що його максимальний вміст залежно від періоду досліджень реєстрували у різних органах, які забезпечують біотрансформацію та екскрецію – печінці, нирках, легенях. Припинення застосування польодоксину забезпечувало швидку елімінацію доксицикліну гіклакту з організму курчат-бройлерів і, через 5 діб (на 216 год досліду) його вміст був мінімальним за увесь період досліджень та становив: у нирках – 0,15±0,01 мкг/г; печінці – 0,12±0,01 мкг/г; грудних м’язах – 0,05±0,01 мкг/г; легенях – 0,04±0,01 мкг/г. Лише в одному зразку серця доксицикліну гіклакт виявляли у кількості 0,01 мкг/г. Ключові слова: польодоксин, доксицикліну гіклакт, курчата-бройлери, розподіл, накопичення, виведення, біодоступність, фармакокінетика, екскреція.

  1. Fairchild A. S., Smith J. L., Idris U. Effects of Orally Administered Tetracycline on the Intestinal Community Structure of Chickens and on tet Determinant Carriage by Commensal Bacteria and Campylobacter jejuni. Applied and environmental microbiology. 2005. № 71(10). Р. 5865–5872. Doi: https://doi.org/ 10.1128/AEM.71.10.5865-5872.2005.
  2. Sanders P., Henri J., Laurentie M. Tools to evaluate pharmacokinetics data for establishing maximum residue limits for approved veterinary drugs: examples from JECFA’s work. Drug Testing and Analysis. 2016. № 8. Р. 565–571. Doi: https://doi.org/10.1002/dta.2006.
  3. Yang F., Wang G., Kong T. Pharmacokinetics of doxycycline after oral administration of single and multiple dose in broiler chickens. Veterinary pharmacology and Therapeutics. 2018. № 41(6). Р. 919–923. Doi: https://doi. org/10.1111/jvp.12699.
  4. Agwuh K., MacGowan A. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of the tetracy-clines including glycylcyclines. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2006. № 58(2). Р. 256–265. Doi: https://doi.org/10.1093/jac/ dkl224.
  5. Hsiao P.F., Chang S.K., Hsu T.H. Pharmacokinetics and tissue depletion of doxycycline ad-ministered at high dosage to broiler chickens via the drinking water. Acta Veterinaria Hungarica. 2016. № 64(4). Р. 472–481. Doi: https://doi.org/10.1556/004.2016.044.
  6. Gbylik‐Sikorska M., Gajda A., Posyniak A. Pharmacokinetic depletion phase of doxycycline in healthy and Mycoplasma gallisepticum‐infected chicken broilers after coad-ministration of enrofloxacin traces. Journal of veterinary pharmacology and therapeutics. 2017. № 41(1). Р. 166–169. Doi:https://doi.org/ 10.1111/jvp.12433.
  7. Elkomy A. A., Eltanany N., Aboubakr M. Pharmacokinetics and tissue residues of Tilmicosin in normal and experimentally ycoplasma Gallisepticum-infected broiler chickens. Benha Veterinary Medical Journal. 2018. № 34(3). Р. 188–205.
  8. Latif A., El-Hanbally S. Disposition kinetics, in vitro plasma protein binding and tis-sue residues of tilmicosin in healthy and experimentally (CRD) infected broiler chickens. International Journal of Basic & Clinical Pharmacology. 2018. № 7(11). Р. 2201–2208.
  9. Pharmacokinetics-pharmacodynamics of antimicrobial therapy: it's not just for mice anymore / Ambrose P.G. et al. Clinical Infection Diseases Journal. 2007. № 44. Р. 79–86.
  10. Bhattaram V. A., C. Bonapace D. M. Impact of pharmacometric reviews on new drug approval and labeling decisions – a survey of 31 new drug applications submitted between 2005 and 2006. Clini-cal Pharmacology and Therapeutics. 2007. № 81(2). Р. 213–222.
  11. Nielsen E.I., Cars O., Friberg L. E. Pharmacokinetic/ pharmacodynamic (PK/PD) indices of antibiotics predicted by a semimechanistic PK/PD model: a step toward mod-elbased dose optimization. Antimicrobi-al Agents and Chemotherapy. 2011. № 55(10). Р. 4619–4630.
  12. Reeves P.T., Cunningham F.M., Lees P., Elliott J. Drug residues. in Handbook of Experimental Pharma-cology. Comparative and Veterinary Pharmacology. 2010. Р. 265–290.
  13. Borghi A. A., Palma M. S. Tetracycline: production, waste treatment and envi-ronmental impact assessment. Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences. 2014. № 50(1). Р. 25–40. Doi: http://dx.doi.org/10.1590/S1984- 82502011000100003
  14. Abu-Basha E. A., Al-Shunnaq A.F., Gehring R. Comparative Pharmacokinetics and Bioavailability of Two Tylosin Formulations in Chickens after Oral Administration. Journal of the Hellenic Veterinary Medical Society. 2012. № 63. Р. 159–165.
  15. Mestorino N., Zeinsteger I. P., Buchamer I. A. Tissue depletion of doxycycline after its oral administration in food producing chicken for fattening. International Journal of Avian & Wildlife Biology. 2018. № 3(3). P. 252–257.
  16. Anadón A., Gam-boa F., Aránzazu Martínez M. Plasma disposition and tissue depletion of chlortetracy-cline in the food producing animals, chickens for fattening. Food Chemical Toxicology. 2012. № 50(8). Р. 2714–2721.
  17. Peeters L., Croubels S., Rasschaert G. Effect of residual doxycycline concentrations on resistance selection and transfer in porcine commensal Escherichia coli. International Journal Antimicrobial Agents. 2018. № 51(1). Р.123–127.
  18. El–Gendi A.Y., Atef M., Amer A.M. Pharmacokinetic tissue distribution of doxycycline in broiler chickens pretreated with either: diclazuril or halofuginon. Food Chemical Toxicology. 2010. № 48(11). Р. 3209–3214.
  19. Gajda A., Posyniak A., Tomczyk G. LC–MS/MS analysis of doxycycline residues in chicken tis-sues after oral administration. Bulletin – Veterinary Institute in Pulawy. 2014. № 58(4). Р. 573–579.
  20. Vandenberge V., Delezie E., Huyghebaert G. Residues of sulfadiazine and doxycycline in broiler liver and muscle tissue due to cross contamination of feed. Food additives & contaminants. Part A, Chemistry, analysis, control, exposure & risk assessment. 2012. № 29(2). Р. 180–188.
ДолученняРозмір
PDF icon tyshkivskaya_2_2020.pdf (17)514.89 КБ