Ви є тут

Обґрунтування та ефективність стимуляції статевої охоти у кобил за анафродизії

Дані літератури щодо об'єктивності клінічного та гормонального методів діагностики розладів статевих залоз суперечливі, тому що вони не завжди об’єктивно відображають стан перебігу фолікуло-лютеогенезу. Водночас, взаємозвʼязок між клінічними та ендокринними показниками наразі недостатньо зʼясований, що не дозволяє розробити обґрунтоване використання препаратів, які прискорюють прояв статевого збудження у кобил. У звʼязку з цим дослідження були спрямовані на вивчення залежності гормональних показників від розмірів, форми і консистенції статевих залоз та визначення ефективності стимуляції статевого збудження препаратами простагландину Ф-2α. Перед проведенням досліду враховували те, що екзогенний простагландин Ф-2α має як лютеолітичні властивості – обумовлює лізис жовтих тіл, так і стимулювальні – впливає на вивільнення гіпоталамусом Гн-РГ та гіпофізом гонадотропних гормонів (ФСГ, ЛГ), що приводить до прискорення прояву феноменів стадії збудження статевого циклу. Із даних, поданих у статті видно, що після застосування естрофану статеву охоту виявили у більшої кількості тварин, ніж за введення біоестрофану та у контролі. Спостерігали, що ефективність біоестрофану в порівнянні з естрофаном, за деякими показниками була нижчою: виявили статеву охоту у тварин на 29 % менше, тривалість її була на 1,5 доби довшою (8,2±1,6 проти 6,7±0,6 ), а заплідненість – на 19 % нижчою. Реакція тварин на введення препаратів до прояву потенційного лібідо (охоти з чіткими ознаками) була майже однаковою (7,0±1,8 та 7,3±1,2 діб). Ефективність препаратів простагландину Ф-2α, застосованих кобилам з анафродизією для стимуляції настання стадії збудження статевого циклу залежить від значення ІПРЯ (інтегральний показник розмірів яєчників), яке характеризує активність статевих залоз та рефрактерність їх у екзогенних простагландинів. За великого значення ІПРЯ – 14–18 см, порівняно з контролем, введення естрофану та біоестрофану збільшило кількість кобил, які проявили статеву охоту на 47,5 та 27,0 %, прискорило настання статевого збудження на 9 та 8 діб, сприяло підвищенню запліднюваності на 43 та 30 %. Враховуючи наведене вище, ІП (інтегральний показник) розмірів яєчників кобил можна використовувати для уточнення діагнозу – гіпофункція та персистенція жовтого тіла статевих залоз.

Ключові слова: статевий цикл, статева охота, екзогенний простагландин Ф-2α, анафродизія, неплідність, кобили.

  1. Подвалюк Д.В. Оцінка методів визначення оптимального часу для осіменіння кобил. Ветеринарна медицина України. 2001. № 2. С. 42–43.
  2. Яблонський В.А., Хомин С.П., Калиновський Г.М., Харута Г.Г. Ветеринарне акушерство, гінекологія та біотехнологія відтворення тварин з основами андрології/ за ред. В.А. Яблонського та С.П. Хомина. 3-тє вид., перероб. та доп. Вінниця: Нова Книга, 2011. 592 с.
  3. Березовський А.В., Харенко М.І., Подвалюк Д.В., Харута Г.Г. Фізіологія та патологія розмноження коней: навч. посіб. / за заг. ред. А.В. Березовського та М.І. Харенка. Київ: ДІА, 2014. 440 с.
  4. Daels P.F., Mohammed H., Montavon S.M.E. Endogenous prostaglandin secretion during cloprostenol-induced abortion in mares. Anim Reprod Sci. 1995. No 40. Р. 305–321.
  5. Xiao G., Wei J., Yan W. Improved outcomes from the administration of progesterone for patients with acute severe traumatic brain injury: a randomized controlled trial. Crit Care. 2008. No 12 (2). 61 р.
  6. Харенко М.І., Хомин С.П., Власенко С.А. Застосування тканинних препаратів в акушерстві, гінекології та біотехнології розмноження тварин. Суми: Козацький вал. 2005. 126 с.
  7. Харута Г.Г., Вельбівець М.В., Волков С.С., Власенко С.А. Відтворення сільськогосподарських тварин/ за ред. Г.Г. Харути. Біла Церква: БНАУ, 2012. 328 с.
  8. Estrogenicity of novel phase I and phase II metabolites of zearalenone and cis-zearalenone / S.S. Drzymala et al. Toxicon. 2015. No 105. P. 10–2. DOI:10. 1016/j.toxicon.2015.08.027
  9. Santos V.G., Bettencourt E.M., Ginther O.J. Hormonal, luteal, and follicular changes during initiation of persistent corpus luteum in mares. Theriogenology. 2015. No 83. Р. 757–765. DOI:10.1016/j.theriogenology.2014.11.009
  10. Andriichuk A.V., Tkachenko H.M., Tkachova I.V. Oxidative Stress Biomarkers and Erythrocytes Hemolysis in Well–Trained Equine Athletes Before and After Exercise. Journal of Equine Veterinary Science. 2015. No 10. Р. 1–12.
  11. Andriichuk A.V., Tkachenko H.M., Tkachova I.V. Hematological changes and resistance of erythrocytes of Crimean horses in response to 32 km races. ISSN: 2312-3370, Agricultural Science and Practice. 2016. Vol. 3. No 1. Р. 67–73.
  12. Irvine C., Alexander S., McKinnon A. Reproductive hormone profiles in mares during the autumn transition as determined by collection of jugular blood at 6 h intervals throughout ovulatory and anovulatory cycles. J Reprod Fertil Dev. 2000. P. 101–109. DOI:10.1530/reprod/118.1.101
  13. Tkachova I.V. The influence of Hungarian horses on the genotype formation of Ukrainian Warmblood breed ISSN: 1734–0926, Slupskie Prace Biologiczne, Instytut Biologii i Ochrony Środowiska Akademii Pomorskiej w Słupsku. 2016. No 13. P. 317–330.
  14. Defective secretion of prostaglandin F2α during development of idiopathic persistent corpus luteum in mares / O.J. Ginther et al. Domest Anim Endocrinol. 2016. No 55. Р. 60–65. DOI:10.1016/j. domaniend.2015.10.004
  15. Robertson C., Saraswati M., Balakrishnan B. Progesterone for neuroprotection in a rat model of pediatric traumatic brain injury. J Neurotrauma. 2012. No 29. Р. 220–221.
  16. Morris S., Kelleman A.A., Stawicki R.J. Transrectal ultrasonography and plasma progestin profiles identifies feto-placental compromise in mares with experimentally induced placentitis. Theriogenology. 2007. No 67. Р. 681–691.
  17. Douglas R.H. Endocrine diagnostics in the brood mare: what you need to know about progestins and estrogens. In: Proceedings. Society for Theriogenology. 2004. Р. 106–115.
  18. Daels P.F., Besognet B., Hansen B. Effect of progesterone on prostaglandin F-2 alpha secretion and outcome of pregnancy during cloprostenol-induced abortion in mares. Am J Vet Res. 1996. No 57. Р. 1331–1337.
  19. Daels P.F., Mohammed H., Odensvik K. Effect of flunixin meglumine on endogenous prostaglandin-F-2-alpha secretion during cloprostenol-induced abortion in mares. Am J Vet Res. 1995. No 56. Р. 1603–1610.
ДолученняРозмір
PDF icon ordin_1_2023.pdf655.2 КБ