Ви є тут

Дослідження вмісту Цинку та Мангану в сироватці крові, пір’ї та кігтях у 14-, 21- і 28-добових курчат-бройлерів хворих на пероз

Вибракування через некондиційність, зменшення маси тіла, смертністьта як наслідок економічні збитки в зв’язку з перозом, за різними оцінкамистановлять 1–5 % від групи птиці. Через порушення функцій кінцівок птицяможе страждати від ряду захворювань. Недостатність необхідних поживнихречовин має важливе значення у розвитку перозу в домашньої птиці. В багатьох фермерських господарствах через економію коштів, здешевлюютькомбікорми для бройлерів, що в подальшому може призвести до виникненняпорушення метаболізму в організмі птиці. Тому діагностика цих порушеньпотребує нових підходів. Сучасна наука все більш схиляється до неінвазивної діагностики метаболічних патологій. У гуманній медицині для дослідження сталого дефіциту мікроелементів використовують нігті та волосся.У ветеринарній медицині за дослідження дефіциту мікроелементів як методнеінвазивної діагностики використовують шерсть тварин. За результатами досліджень встановлено концентрації мікроелементів (Zn, Mn) у пір’ї 14-, 21- та 28-добових клінічно здорових та хворих на перозкурчат-бройлерів. На 14 добу захворювання концентрація Цинку та Манганув курчат-бройлерів хворих на пероз становила 65,6±2,73 та 17,4±0,79 мкг/г,що було вірогідно більше від клінічно здорової птиці 46,5±1,57 (p<0,001) та10,9±0,80 (p<0,001) мкг/г. Аналізуючи показники мікроелементів у кігтях хворих на пероз курчат-бройлерів 28-добового віку встановлено вміст Мангану10,2±0,51 мкг/г,що вірогідно менше від клінічно здорової птиці 15,7±0,97 мкг/г (p<0,01). Концентрація Цинку в кігтях здорової птиці становить 127,6±3,65 мкг/г, щомало тенденцію до збільшення порівняно з показником у здорової птиці –98,3±5,40 мкг/г. Результати аналізу свідчать про те, що у птиці з ознаками перозу Цинкта Манган накопичуються в більших концентраціях у пір’ї порівняно з клінічно здоровими курчатами. Водночас у кігтях зменшується концентраціяцих елементів у курчат з перозом відносно здорової птиці групи.

Ключові слова: мікроелементи, неінвазивна діагностика, метаболічніпатології, птиця.

 

 

  1. Greenacre C.B. Backyard Poultry Medicine and Surgery. Hoboken, NJ. USA: John Wiley & Sons, Inc. 2015. DOI:10.1111/avj.12545
  2. Soetan K.O., Olaiya C.O., Oyewole O.E. The importance of mineral elements for humans , domestic animals and plants: A review. African J. Food Sci., 2010. Vol. 4. no. May. P. 200–222. URL:www.researchgate.net/publication/267403443_The_importance_of_mineral_ele... humans_domestic_animals_and_plants_A_review
  3. Lebedev S.V., Kharlamov A.V., Kurilkina M.Y. Selection of bioindicators to assess the elemental status of animals. Anim. Husb. Fodd. Prod., 2019. Vol. 102. no. 1. P. 71–78. DOI:10.33284/2658-3135-102-1-71.
  4. Tufarelli V., Laudadio V. Manganese and its role in poultry nutrition: an overview. J. Exp. Biol. Agric. Sci. 2017. Vol. 5. no. 6. P. 749–754. DOI:10.18006/2017.5(6).749.754.
  5. Widiyanto W., Kusumanti E., Mulyono M., Surahmanto S. The influence of season and topography on manganese (Mn) status of grazing java thin-tailed sheep in the agriculture area in mijen of semarang-central java. J. Indones. Trop. Anim. Agric. 2013. Vol. 38. no. 2. P. 131–138. DOI:10.14710/jitaa.38.2.131-138.
  6. Effects of Manganese deficiency on the microstructure of proximal tibia and OPG/RANKL gene expression in chicks/R. Liu et al. Vet. Res. Commun. 2015. Vol. 39. no. 1. P. 31–37. DOI:10.1007/s11259-015-9626-5.
  7. Kamran Azad S., Shariatmadari F., Karimi Torshizi M.A., Ahmadi H. Effect of zinc concentration and source on performance, tissue mineral status, activity of superoxide dismutase enzyme and lipid peroxidation of meat in broiler chickens. Anim. Prod. Sci. 2018. Vol. 58. no. 10. 1837 p. DOI:10.1071/AN15758.
  8. Organic or inorganic Zinc in poultry nutrition: a review/ M.E. Abd El-Hack et al. Worlds. Poult. Sci. J. 2017. Vol. 73. no. 4. P. 904–915. DOI: 10.1017/S0043933917000769.
  9. Sakara V., Melnik A., Moskalenko V. Features of blood selection in kurchat broilers of different age. Nauk. vìsnik vet. med. 2018. Vol. 2. no. 2 (144). P. 60–65. DOI:10.33245/2310-4902-2018-144-2-60-65.
  10. Owen J.C. Collecting, processing, and storing avian blood: A review. J. F. Ornithol. 2011. Vol. 82. no. 4. P. 339– 354. DOI:10.1111/j.1557-9263.2011.00338.x.
  11. Karpas Z. Urine, hair, and nails as indicators for ingestion of uranium in drinking water. Health Phys. 2005. Vol. 88. no. 3. P. 229–242. DOI:10.1097/01.HP.0000149883.69107.ab.
  12. Sheshnitsan T.L., Sheshnitsan S.S., Kapitalchuk M.V. Contents of Manganese, Zinc, Copper and Molybdenum in the Hair of the Farm Animals in the Lower Dniester Valley. South Russ. Ecol. Dev. 2019. Vol. 13. no. 4. P. 166–173. DOI:10.18470/1992-1098-2018-4-166-173.
  13. Monitoring spatially resolved trace elements in polar bear hair using single spot laser ablation ICP-MS/ T. Bechshoft et al. Ecological Indicators. 2020. Vol. 119. P. 2–16. DOI:10.1016/j.ecolind. 2020.106822
  14. Mikoni N.A. Trace element contamination in feather and tissue samples from Anna’s hummingbirds. Ecol. Indic. 2016. Vol. 80. no. December. P. 96–105. DOI:10.1016/j.ecolind. 2017.04.053.
  15. Karatela S., Ward N.I., Zeng I.S., Paterson J. Status and interrelationship of toenail elements in Pacific children. J. Trace Elem. Med. Biol. 2017. Vol. 46. no. November. P. 10–16. DOI:10.1016/ j.jtemb.2017.11.004.
  16. Effect of the Inclusion of Organic Copper, Manganese, And Zinc in The Diet of Layers on Mineral Excretion, Egg Production, and Eggshell Quality”/ L.S. Carvalho et al. Brazilian J. Poult. Sci., 2015. no. 10. P. 87–92. DOI:10.1590/1516-635.
  17. Wang G. Comparison of Inorganic and Organically Bound Trace Minerals on Tissue Mineral Deposition and Fecal Excretion in Broiler BreedersBiol. Trace Elem. Res. 2019. Vol. 189. no. 1. P. 224–232. DOI:10.1007/s12011-018-1460-5.
  18. Clair S. Heavy Metals, Selenium, and Pacific Dunlin: Patterns of Accumulation, Exposure from Prey and Toxicity Risks. 2012. P. 1–113. URL:summit.sfu.ca/system/files/iritems1/12500/etd7485_ CStClair.pdf.
  19. Use of trace elements in feathers of sand martin Riparia riparia for identifying moulting areas/T. Szép et al. J. Avian Biol. 2013. Vol. 34. no. 3. P. 307–320. DOI:10.1034/j.1600-048X.2003.03026.x.
  20. Leeson S., Walsh T. Feathering in commercial poultry II. Factors influencing feather growth and feather loss,” Worlds. Poult. Sci. J. 2010. Vol. 60. no. 01. P. 52–63. DOI:10.1079/wps20034.
  21. He K. Trace elements in nails as biomarkers in clinical research”. Eur. J. Clin. Invest. 2011. Vol. 41. no. 1. P. 98–102. DOI:10.1111/j.1365-2362.2010.02373.x.
  22. Ishak I., Rosli F.D., Mohamed J., Mohd Ismail M.F. Comparison of digestion methods for the determination of trace elements and heavy metals in human hair and nails. Malaysian J. Med. Sci. 2015. Vol. 22. no. 6. P. 11–20. PMCID: PMC5295749
  23. Influence of organic forms of Copper, Manganese and Iron on bioaccumulation of these metals and Zinc in laying hens/Z. Dobrzański et al. J. Elem. 2008. Vol. 13. no. 3. P. 309–319.
  24. Holasová M., Pechová A., Husaková T. The evaluation of Cu, Zn, Mn, and Se concentrations in the hair of South American camelids”. Acta Vet. Brno. 2017. Vol. 86. no. 2. P. 141–149. DOI:10.2754/ avb201786020141.
  25. Trace Mineral Nutrition in Poultry and Swine/ J.D. Richards et al. Asian-Australasian J. Anim. Sci. 2010. Vol. 23. no. 11. P. 1527–1534. DOI:10.5713/ajas.2010.r.07.
  26. Ishak I., Rosli F., Mohamed J., Mohd Ismail F. Comparison of digestion methods for the determination of trace elements and heavy metals in human hair and nails, Malaysian J. Med. Sci. 2015. Vol. 22. no. 6. P. 11–20. PMID:28223880
  27. Burrell A. Responses of broilers to dietary Zinc concentrations and sources in relation to environmental implications. Br. Poult. Sci. 2004. Vol. 45. no. 2. P. 225–263. DOI:10.1080/0007 1660410001715867.
ДолученняРозмір
PDF icon sakara_2_2021.pdf407.6 КБ