Ви є тут

Морфологічні і біохімічні показники крові курчат-бройлерів, хворих на орнітобактеріоз, та за застосування польодоксину і тилмоксу 25 %

У статті представлено результати досліджень морфологічних та біохімічних показників крові курчат-бройлерів КОББ-500, хворих на орнітобактеріоз, яких не лікували, та хворої птиці, для лікування якої застосовували препарати Польодоксин (діюча речовина – доксицикліну гіклат) та Тилмокс 25 % (діюча речовина – тилмікозину фосфат). Дослідженнями встановлено, що орнітобактеріоз курчат-бройлерів характеризується еритроцитопенією, гіпогемоглобінемією та зменшенням показника гематокриту. У птиці дослідних груп, яким відповідно до схеми лікування застосовували польдоксин та тилмокс 25 %, кількість еритроцитів, вміст гемоглобіну в крові та показник гематокриту на 216 год досліду були більшими ніж у контролі: кількість еритроцитів – на 19 та 36 % відповідно; вміст гемоглобіну – на 17 % у птиці обох дослідних груп; показник гематокриту – на 19 та 23 % відповідно (р≤0,05). У складі білків сироватки крові хворих на орнітобактеріоз курчат-бройлерів контрольної групи було встановлено диспротеїнемію, за якої на 216 год досліду спостерігали зменшення вмісту протеїну загального та альбумінів на 12 та 34 % відповідно. Одночасно спостерігали збільшення вмісту глобулінів на 32 %. Уміст протеїну загального та альбумінів у сироватці крові птиці 2 та 3 дослідних груп збільшувався і на 216 год перевищував показник контролю на 24 та 33 % (р≤0,05) відповідно, альбумінів – на 56 % у птиці обох дослідних груп. Уміст глобулінів у сироватці крові птиці дослідних груп за період від 24 до 216 год досліду був у межах 10,72–11,98 г/л, тоді як у контролі – 11,32–15,21 г/л. У сироватці крові курчат-бройлерів контрольної групи за період з 24 до 216 год зростала активність аланінової амінотрансферази на 14 %, тоді як у сироватці крові птиці дослідних груп, яким застосовували польодоксин та тилмокс 25 % її активність знижувалася, і на 96, 120 та 216 год була вірогідно меншою, ніж у контролі. За орнітобактеріозу курчат-бройлерів контрольної групи спостерігали гіпокальціємію, тоді як у сироватці крові птиці 2 та 3 дослідних груп, яким застосовували лікування, вміст кальцію загального у період з 24 до 216 год був вірогідно вищим, ніж у контролі. У птиці контрольної та 2-ї дослідної груп (застосовували польодоксин) спостерігали гіпофосфатемію, а вміст фосфору неорганічного у їх сироватці крові на 216 год був меншим ніж у птиці 3-ї дослідної групи (застосовували тилмокс 25 %) на 43 та 23 % відповідно.

Ключові слова: доксициклін, тилмікозин, респіраторні хвороби птиці, O. Rhinotracheale, антибіотики, біодоступність.

  1. Devriese L.A., De Herdt P., Haesebrouck F. Antibiotic sensitivity and resistance in Ornithobacterium rhinotracheale strains from Belgian broiler chickens. Avian Pathology. 2010. Vol. 30(3). P. 197–200. Doi:10.1080/03079450120054596.
  2. Ornithobacterium rhinotracheale: An Update Review about An Emerging Poultry Pathogen/ E. V. Barbosa et all. Veterinary Science. 2020. Vol. 7(1). P. 1–13. Doi:10.3390/ vetsci7010003.
  3. Comparative pathomorphological, bacteriological and serological examination of broiler breeders and pheasants experimentally infected with Ornithobacterium rhinotracheale/ P. Gavrilović et all. Avian Pathology. 2015. Vol. 45(5). P. 513–519. Doi:10.1080/03079457.2016.1168514
  4. Тишківська А.М., Духницький В.Б., Тишківський М.Я. Вплив польодоксину та тилмоксу 25 % на морфологічні та біохімічні показники крові курчат-бройлерів. Науковий вісник ветеринарної медицини. Білоцерківський національний аграрний університет. 2020. № 1:154. С. 72–80. Doi:10.33245/2310-4902-2020-154-1-72-79
  5. Тишківська А.М., Духницький В.Б., Тишківський М.Я. Надходження та розподіл доксицикліну в організмі курчат-бройлерів. Науковий вісник ветеринарної медицини. Білоцерківський національний аграрний університет. 2020. № 2:155. С. 60–74. Doi:10.33245/2310-4902-2020-160-2-158-165
  6. Тишківська А.М., Духницький В.Б. Вплив препаратів польодоксину та тилмоксу 25 % на біохімічні показники сироватки крові курчат-бройлерів. Сучасне птахівництво. 2020. № 7–8. Doi:10.31548/poultry2020.07-08.007
  7. Mayahi M., Gharibi D., Ghadimipour R., Talazadeh F. Isolation, identification and antimicrobial sensitivity of Ornithobacterium rhinotracheale in broilers chicken flocks of Khuzestan, Iran. Veterinary Research Forum. 2016. No. 7 (4). Р. 341–346. PMID: 28144427
  8. Hauck R., Chin R. P., Shivaprasad H. L. Retrospective study on the isolation of ornithobacterium rhinotracheale from chickens and turkeys in central california: 294 cases (2000-12). Avian Diseases. 2015. Vol. 59(1). P. 130–137. Doi:10.1637/10935-091114-RegR
  9. Comparison of pharmacokinetics of tilmicosin in healthy pigs and pigs experimentally infected with Actinobacillus pleuropneumoniae/ J. Xiong et all. New Zealand Vveterinary Journal. 2019. Vol. 67(5). P. 257–263. Doi:10.1080/00480169.2019.1633434.
  10. Ludden T. M. Pharmacokinetic interactions of the macrolide antibiotics. Clinical Pharmacokinetics.1985. Vol. 10(1). P. 63–79. Doi:10.2165/00003088-198510010-00003.
  11. Kilic A., Timurkaan N., Ertaş A. A., Yilmaz F. Pathological examination and bacterial re-isolation by culture and PCR of experimental Ornithobacterium rhinotracheale infection in broiler chickens. Revue de médecine vétérinaire, 2009. Vol. 160(3). P. 140–144. URL:https://www.revmedvet. com/2009/RMV160_ 140_144.pdf
  12. Phylogenetic relationship of Ornithobacterium rhinotracheale strains/ R.M. Oca-Jimenez et all. The Journal of veterinary medical science. 2018. Vol. 80(6). P. 869–873. Doi:10.1292/jvms. 17-0474
  13. Effect of experimental Ornithobacterium rhinotracheale infection along with live infectious bronchitis vaccination in broiler chickens/ H.F. Ellakany et all. Poultry Science. 2019. Vol. 98(1). P. 105–111. Doi:10.3382/ps/pey324
  14. Elsayed M., Elkomy A., Aboubakr M., Morad M. Tissue residues, hematological and biochemical effects of tilmicosin in broiler chicken. Veterinary Medicine International. 2014. Vol. 4. Doi:10.1155/2014/502872
  15. El-Mahmoudy, A., and Gheith, I. The antinociceptive potential of tilmicosin against chemical-induced but not thermal-induced pain in mice. Internet Journal Immunopathology Pharmacology. 2016. Vol. 29(1). P. 9–16. Doi: 10.1177/0394632015593232.
  16. Pharmacokinetics and tissue residues of tilmicosin in normal and experimentally Mycoplasma gallisepticum infected broiler chickens/ A.A. Elkomy et all. Benha Veterinary Medical Journal. 2018. Vol. 5(1). P. 11–16. Doi:10.14419/ijpt.v5i1.7084
  17. Creemer L., Beier R., Kjehl D. Facile synthesis of tilmicosin and tylosin related haptens for use as protein conjugates. The journal of antibiotics. 2018. Vol. 56(5). P. 481–487. Doi:10.7164/antibiotics.56.481
  18. Rasheed M., Ashraf M., Javeed A., Anjum A.A. Toxicological evaluation of tilmicosin after intramuscular injection in broiler chicken. The Journal of Animal & and Plant Sciences. 2018. Vol. 28(6). P. 1678–1686. ISSN: 1018- 7081. URL:http://www.thejaps.org.pk/docs/v-28-06/19.pdf (0)
  19. Modric S., Martine M. Patient variation in veterinary medicine-part II-influence of physiological variables. Journal of Veterinary Pharmacology And Therapeutics. 2018. Vol. 34(3). P. 209–223. Doi: 10.1111/j.1365-2885.2010.01249.x
  20. Левченко В.І., Новожицька Ю.М., Сахнюк В.В., Жила І.А. Біохімічні методи дослідження крові тварин: методичні рекомендації. 2004.104 c.
ДолученняРозмір
PDF icon tyshkivska_a_1_2021.pdf (13)650.14 КБ