Ви є тут
Морфологічні і біохімічні показники крові курчат-бройлерів, хворих на орнітобактеріоз, та за застосування польодоксину і тилмоксу 25 %
У статті представлено результати досліджень морфологічних та біохімічних показників крові курчат-бройлерів КОББ-500, хворих на орнітобактеріоз, яких не лікували, та хворої птиці, для лікування якої застосовували препарати Польодоксин (діюча речовина – доксицикліну гіклат) та Тилмокс 25 % (діюча речовина – тилмікозину фосфат). Дослідженнями встановлено, що орнітобактеріоз курчат-бройлерів характеризується еритроцитопенією, гіпогемоглобінемією та зменшенням показника гематокриту. У птиці дослідних груп, яким відповідно до схеми лікування застосовували польдоксин та тилмокс 25 %, кількість еритроцитів, вміст гемоглобіну в крові та показник гематокриту на 216 год досліду були більшими ніж у контролі: кількість еритроцитів – на 19 та 36 % відповідно; вміст гемоглобіну – на 17 % у птиці обох дослідних груп; показник гематокриту – на 19 та 23 % відповідно (р≤0,05). У складі білків сироватки крові хворих на орнітобактеріоз курчат-бройлерів контрольної групи було встановлено диспротеїнемію, за якої на 216 год досліду спостерігали зменшення вмісту протеїну загального та альбумінів на 12 та 34 % відповідно. Одночасно спостерігали збільшення вмісту глобулінів на 32 %. Уміст протеїну загального та альбумінів у сироватці крові птиці 2 та 3 дослідних груп збільшувався і на 216 год перевищував показник контролю на 24 та 33 % (р≤0,05) відповідно, альбумінів – на 56 % у птиці обох дослідних груп. Уміст глобулінів у сироватці крові птиці дослідних груп за період від 24 до 216 год досліду був у межах 10,72–11,98 г/л, тоді як у контролі – 11,32–15,21 г/л. У сироватці крові курчат-бройлерів контрольної групи за період з 24 до 216 год зростала активність аланінової амінотрансферази на 14 %, тоді як у сироватці крові птиці дослідних груп, яким застосовували польодоксин та тилмокс 25 % її активність знижувалася, і на 96, 120 та 216 год була вірогідно меншою, ніж у контролі. За орнітобактеріозу курчат-бройлерів контрольної групи спостерігали гіпокальціємію, тоді як у сироватці крові птиці 2 та 3 дослідних груп, яким застосовували лікування, вміст кальцію загального у період з 24 до 216 год був вірогідно вищим, ніж у контролі. У птиці контрольної та 2-ї дослідної груп (застосовували польодоксин) спостерігали гіпофосфатемію, а вміст фосфору неорганічного у їх сироватці крові на 216 год був меншим ніж у птиці 3-ї дослідної групи (застосовували тилмокс 25 %) на 43 та 23 % відповідно.
Ключові слова: доксициклін, тилмікозин, респіраторні хвороби птиці, O. Rhinotracheale, антибіотики, біодоступність.
- Devriese L.A., De Herdt P., Haesebrouck F. Antibiotic sensitivity and resistance in Ornithobacterium rhinotracheale strains from Belgian broiler chickens. Avian Pathology. 2010. Vol. 30(3). P. 197–200. Doi:10.1080/03079450120054596.
- Ornithobacterium rhinotracheale: An Update Review about An Emerging Poultry Pathogen/ E. V. Barbosa et all. Veterinary Science. 2020. Vol. 7(1). P. 1–13. Doi:10.3390/ vetsci7010003.
- Comparative pathomorphological, bacteriological and serological examination of broiler breeders and pheasants experimentally infected with Ornithobacterium rhinotracheale/ P. Gavrilović et all. Avian Pathology. 2015. Vol. 45(5). P. 513–519. Doi:10.1080/03079457.2016.1168514
- Тишківська А.М., Духницький В.Б., Тишківський М.Я. Вплив польодоксину та тилмоксу 25 % на морфологічні та біохімічні показники крові курчат-бройлерів. Науковий вісник ветеринарної медицини. Білоцерківський національний аграрний університет. 2020. № 1:154. С. 72–80. Doi:10.33245/2310-4902-2020-154-1-72-79
- Тишківська А.М., Духницький В.Б., Тишківський М.Я. Надходження та розподіл доксицикліну в організмі курчат-бройлерів. Науковий вісник ветеринарної медицини. Білоцерківський національний аграрний університет. 2020. № 2:155. С. 60–74. Doi:10.33245/2310-4902-2020-160-2-158-165
- Тишківська А.М., Духницький В.Б. Вплив препаратів польодоксину та тилмоксу 25 % на біохімічні показники сироватки крові курчат-бройлерів. Сучасне птахівництво. 2020. № 7–8. Doi:10.31548/poultry2020.07-08.007
- Mayahi M., Gharibi D., Ghadimipour R., Talazadeh F. Isolation, identification and antimicrobial sensitivity of Ornithobacterium rhinotracheale in broilers chicken flocks of Khuzestan, Iran. Veterinary Research Forum. 2016. No. 7 (4). Р. 341–346. PMID: 28144427
- Hauck R., Chin R. P., Shivaprasad H. L. Retrospective study on the isolation of ornithobacterium rhinotracheale from chickens and turkeys in central california: 294 cases (2000-12). Avian Diseases. 2015. Vol. 59(1). P. 130–137. Doi:10.1637/10935-091114-RegR
- Comparison of pharmacokinetics of tilmicosin in healthy pigs and pigs experimentally infected with Actinobacillus pleuropneumoniae/ J. Xiong et all. New Zealand Vveterinary Journal. 2019. Vol. 67(5). P. 257–263. Doi:10.1080/00480169.2019.1633434.
- Ludden T. M. Pharmacokinetic interactions of the macrolide antibiotics. Clinical Pharmacokinetics.1985. Vol. 10(1). P. 63–79. Doi:10.2165/00003088-198510010-00003.
- Kilic A., Timurkaan N., Ertaş A. A., Yilmaz F. Pathological examination and bacterial re-isolation by culture and PCR of experimental Ornithobacterium rhinotracheale infection in broiler chickens. Revue de médecine vétérinaire, 2009. Vol. 160(3). P. 140–144. URL:https://www.revmedvet. com/2009/RMV160_ 140_144.pdf
- Phylogenetic relationship of Ornithobacterium rhinotracheale strains/ R.M. Oca-Jimenez et all. The Journal of veterinary medical science. 2018. Vol. 80(6). P. 869–873. Doi:10.1292/jvms. 17-0474
- Effect of experimental Ornithobacterium rhinotracheale infection along with live infectious bronchitis vaccination in broiler chickens/ H.F. Ellakany et all. Poultry Science. 2019. Vol. 98(1). P. 105–111. Doi:10.3382/ps/pey324
- Elsayed M., Elkomy A., Aboubakr M., Morad M. Tissue residues, hematological and biochemical effects of tilmicosin in broiler chicken. Veterinary Medicine International. 2014. Vol. 4. Doi:10.1155/2014/502872
- El-Mahmoudy, A., and Gheith, I. The antinociceptive potential of tilmicosin against chemical-induced but not thermal-induced pain in mice. Internet Journal Immunopathology Pharmacology. 2016. Vol. 29(1). P. 9–16. Doi: 10.1177/0394632015593232.
- Pharmacokinetics and tissue residues of tilmicosin in normal and experimentally Mycoplasma gallisepticum infected broiler chickens/ A.A. Elkomy et all. Benha Veterinary Medical Journal. 2018. Vol. 5(1). P. 11–16. Doi:10.14419/ijpt.v5i1.7084
- Creemer L., Beier R., Kjehl D. Facile synthesis of tilmicosin and tylosin related haptens for use as protein conjugates. The journal of antibiotics. 2018. Vol. 56(5). P. 481–487. Doi:10.7164/antibiotics.56.481
- Rasheed M., Ashraf M., Javeed A., Anjum A.A. Toxicological evaluation of tilmicosin after intramuscular injection in broiler chicken. The Journal of Animal & and Plant Sciences. 2018. Vol. 28(6). P. 1678–1686. ISSN: 1018- 7081. URL:http://www.thejaps.org.pk/docs/v-28-06/19.pdf
- Modric S., Martine M. Patient variation in veterinary medicine-part II-influence of physiological variables. Journal of Veterinary Pharmacology And Therapeutics. 2018. Vol. 34(3). P. 209–223. Doi: 10.1111/j.1365-2885.2010.01249.x
- Левченко В.І., Новожицька Ю.М., Сахнюк В.В., Жила І.А. Біохімічні методи дослідження крові тварин: методичні рекомендації. 2004.104 c.
Долучення | Розмір |
---|---|
tyshkivska_a_1_2021.pdf | 650.14 КБ |