Ви є тут
POSTPARTUM UTERINE DISEASES IN DAIRY COWS
Післяпологові захворювання матки, включаючи неспецифічні маткові інфекції, знижують репродуктивну здатність молочних корів. Їх діагностують і лікують у 55 % корів після пологів. Як правило, інфекції матки призводять до економічних втрат через збільшення витрат на ветеринарний догляд, зниження молочної продуктивності, порушення репродуктивних функцій і вибракування хворих корів. Клінічно захворювання матки характеризуються гнійними виділеннями з піхви, які зазвичай асоціюються з інфікуванням Escherichia coli і Trueperella pyogenes. Субклінічне захворювання матки асоціюється зі збільшенням числа запальних клітин з або без виявлення патогенних бактерій в матці. Порушення репродуктивної функції опосередковується бактеріальними продуктами обміну речовин (ліпополісахариди, ендотоксини) або запальними медіаторами, які порушують функції сперматозоїдів, яєчників, матки і ембріонів. Методи лікування повинні бути спрямовані на усунення патогенних бактерій в матці, при цьому не порушуючи власних захисних бар'єрів корови в матці. Проте, пропоновані варіанти лікування часто суперечливі. Цей огляд включає критерії для діагностики та класифікації маткових інфекцій у корів, вибору ліків і режимів їх дозування. Також обговорюється проблема стійкості мікробів до протимікробних препаратів та утворення біоплівки. Крім того, з'ясовується роль мікроРНК і її зв'язок з перериванням тільності у корів з патологіями матки.
Ключові слова: захворювання матки, молочна корова, розмноження, інфекції Escherichia coli і Trueperella pyogenes.
https://orcid.org/0000-0002-8221-66781. Gilbert R.O. Pharmacologic considerations in the management of peripartum conditions in the cow / R.O. Gilbert, W.S. Schwark // Vet. Clin. North. Am. Food Anim. Pract. – 1992. – Vol. 8. – Р. 29–56.
2. Defining and diagnosing postpartum clinical endometritis and its impact on reproductive performance in dairy cows / S.J. LeBlanc, T.F. Duffield, K.E. Leslie [et al.] // J. Dairy Sci. – 2002. – Vol. 85. – P. 2223−2236.
3. Endometrial cytology and ultrasonography for the detection of subclinical endometritis in postpartum dairy cows / R. Kasimanickam, T.F. Duffield, R.A. Foster [et al.] // Theriogenology. – 2004. – Vol. 62. – P. 9–23.
4. Path analysis of dry period nutrition, postpartum metabolic and reproductive disorders, and mastitis in Holstein cows / C.R. Curtis, H.N. Erb, C.J. Sniffen [et al.] // J. Dairy Sci. – 1985. – Vol. 68. – P. 2347–2360.
5. Neutrophil function and energy status in Holstein cows with uterine health disorders / D.S. Hammon, I.M. Evjen, T.R. Dhiman [et al.] // Vet. Immunol. Immunopathol. – 2006. – Vol. 113. – P. 21–29.
6. Prepartum behavior and dry matter intake identify dairy cows at risk for metritis / J.M. Huzzey, D.M. Veira, D.M. Weary, M.A. von Keyserlingk // J. Dairy Sci. – 2007. – Vol. 90. – P. 3220–3233.
7. McDougall S. Association between endometritis diagnosis using a novel intravaginal device and reproductive performance in dairy cattle / S. McDougall, R. Macaulay, C. Compton // Anim. Reprod. Sci. – 2007. – Vol. 99. – P. 9–23.
8. Prevalence of endometritis and its effects on reproductive performance of dairy cows / R.O. Gilbert, S.T. Shin, C.L. Guard [et al.] // Theriogenology. – 2005. – Vol. 64. – P. 1879–1888.
9. Risk factors for postpartum uterine diseases in dairy cows / J. Dubuc, T.F. Duffield, K.E. Leslie [et al.] // J. Dairy Sci. – 2010. – Vol. 93. – P. 5764−5771.
10. Rutigliano H.M. Effects of method of presynchronization and source of selenium on uterine health and reproduction in dairy cows / H.M. Rutigliano, F.S. Lima, R.L.A. Cerri // J. Dairy Sci. – 2008. – Vol. 91. – P. 3323−3336.
11. Uterus of the cow after parturition: Bacterial Content / L. Elliot, K.J. McMahon, H.T. Gier, G.B. Marion // Am. J. Vet. Res. – 1968. – Vol. 29. – P. 77−81.
12. Endometrial biopsy in Holstein-Friesian dairy cows, III: bacteriological analysis and correlations with histological findings / B.N. Bonnett, S.W. Martin, V.P. Gannon [et al.] // Can. J. Vet. Res. – 1991. – Vol. 55. – P. 168–173.
13. Uterine bacteriology, resumption of ovarian activity and fertility in postpartum cows kept in large-scale dairy herds / G. Huszenicza, M. Fodor, M. Gacs [et al.] // Reprod. Domest. Anim. – 1999. – Vol. 34. – P. 237–245.
14. Specific strains of Escherichia coli are pathogenic for the endometrium of cattle and cause pelvic inflammatory disease in cattle and mice / I.M. Sheldon, A.N. Rycroft, B. Dogan [et al.] // PLoS One. – 2010. – Vol. 5. – P. 91–92.
15. Relationship between bacteriological findings in the second and fourth weeks postpartum and uterine infection in dairy cows considering bacteriological results / A. Werner, V. Suthar, J. Plöntzke, W. Heuwieser // J. Dairy Sci. – 2012. – Vol. 95. – P. 7105–7114.
16. Bovine herpesvirus 4-associated postpartum metritis in a Spanish dairy herd / A. Monge, L. Elvira, J.V. Gonzalez [et al.] // Res. Vet. Sci. – 2006. – Vol. 80. – P. 120–125.
17. Nak Y. Course and severity of postpartum metritis cases following antibiotic and PGF2α administration in postpartum metritis cows infected with BoHV-4 / Y. Nak, S.B. Dagalp, C. Cetin // Transbound Emerg. Dis. – 2011. – Vol. 58. – P. 31–36.
18. The effect of Escherichia coli lipopolysaccharide and tumour necrosis factor alpha on ovarian function / E.J. Williams, K. Sibley, A.N. Miller [et al.] // Am. J. Reprod. Immunol. – 2008. – Vol. 60. – P. 462–473.
19. Infertility in the cow // Arthur’s veterinary reproduction and obstetrics / D.E. Noakes, T.J. Parkinson, G.C.W. England editors. – 8th ed. – London: WB Saunders, 2001. – P. 383–472.
20. Ayalon N. A review of embryonic mortality in cattle / N. Ayalon // J. Reprod. Fertil. – 1978. – Vol. 54. – P. 483–493.
21. Almeida A.P. The relationship between uterine environment and early embryonic mortality in normal and repeat breeder Friesian cows / A.P. Almeida, N. Ayalon, D. Faingold // Proc. 10th Int. Congr. Anim. Reprod. AI. – 1984. – Vol. 4. – P. 438.
22. Associations among serum pro- and anti-inflammatory cytokines, metabolic mediators, body condition, and uterine disease in postpartum dairy cows / R.K. Kasimanickam, V.R. Kasimanickam, J.R. Olsen [et al.] // Reprod. Biol. Endocrinol. – 2013. – Vol. 11. – P. 103.
23. Kasimanickam R. Mucin 1 and cytokines mRNA in endometrium of dairy cows with postpartum uterine disease or repeat breeding / R. Kasimanickam, V. Kasimanickam, J.P. Kastelic // Theriogenology. – 2014. – Vol. 81. – P. 952–958.
24. Brayman M. MUC1: a multifunctional cell surface component of reproductive tissue epithelia / M. Brayman, A. Thathiah, D.D. Carson // Reprod. Biol. Endocrinol. – 2004. – Vol. 2. – P. 1–9.
25. Bovine Mucin1 is a highly polymorphic gene encoding an extensively glycosylated mucin that binds bacteria / L. Sando, R. Pearson, C. Gray [et al.] // J. Dairy Sci. – 2009. – Vol. 92. – P. 5276–5291.
26. Devine P. Mucins: structure, function and associations with malignancy / P. Devine, I.F.C. Mackenzie // Bioassays. – 1992. – Vol. 14. – P. 619–625.
27. Lagow E. Mammalian reproductive tract mucins / E. Lagow, M.M. De Souza, D.D. Carson // Hum. Reprod. Update. – 1999. – Vol. 5. – P. 280–292.
28. Aplin J.D. MUC1, endometrium and embryo implantation / J.D. Aplin, N.A. Hey // Biochem. Soc. Trans. – 1995. – Vol. 23. – P. 826–831.
29. Wesseling J. (MUC1) overexpression inhibits integrin-mediated cell adhesion to extracellular matrix components / J. Wesseling, S.W. van der Valk, J. Hilkens // J. Cell Biol. – 1995. – Vol. 129. – P. 255–265.
30. Meseguer M. Human endometrial MUC1 is up-regulated by progesterone and down-regulated in vitro by the human blastocyst / M. Meseguer, J.D. Aplin, P. Caballero-Campo // Biol. Reprod. – 2001. – Vol. 64. – P. 590–601.
31. Kasimanickam V. Detection of genes encoding multidrug resistance and biofilm virulence factor of uterine pathogenic bacteria in postpartum dairy cows / V. Kasimanickam, K. Hanson, R. Kasimanickam // Theriogenology. – 2016. – Vol. 85. – P. 173–179.
32. Kasimanickam V.R. Detection of genes encoding multidrug resistance and biofilm virulence factor in uterine pathogenic bacteria in postpartum dairy cows / V.R. Kasimanickam, K. Owen, R.K. Kasimanickam // Theriogenology. – 2016. – Vol. 85. – P. 173–179.
| Долучення | Розмір |
|---|---|
 2016_2_kasimanickam_ua.pdf | 338.32 КБ |