Ви є тут

Головна » Науковий вісник ветеринарної медицини № 1'2026

Роль патогенних мікроорганізмів у розвитку різних форм маститу у корів

Мастит у корів залишається однією з найактуальніших проблем молочного скотарства, що спричиняє значні економічні збитки через зниження продуктивності, погіршення якості молока та витрати на лікування. Визначення збудників маститу має ключове значення для ефективної терапії та профілактики хвороби. Дослідження проведено на 133 коровах, від яких відібрано 346 проб молока із різних чвертей молочної залози. Клінічно встановлено серозний мастит у 82,55 % випадків, катаральний – у 6,98 %, фібринозний та гнійний – по 2,33 %, геморагічний – у 5,81 %. Бактеріологічний аналіз показав, що серозний мастит найчастіше спричиняли Streptococcus uberis (4,22 %), Escherichia coli (2,82 %) та Pseudomonas aeruginosa (2,82 %). Для катаральної форми характерним було виявлення Streptococcus dysagalactiae (25,00 %), Staphylococcus aureus (20,83 %) та Streptococcus agalactiae (12,50 %). Фібринозний мастит супроводжувався інфекціями Staphylococcus aureus (37,50 %), Enterobacter spp. (50,00 %) та Pseudomonas aeruginosa (100 %). За гнійного перебігу переважали Staphylococcus aureus (50,00 %) та Streptococcus uberis (37,50 %), тимчасом геморагічний мастит мав найрізнома нітніший мікробний спектр, включно з Escherichia coli (20,00 %) та Staphylococcus aureus (10,00 %). Отримані результати свідчать про поліетіологічний прояв маститу у корів. За легких форм переважають стрептококи, тимчасом тяжкі форми асоціюються з умовно-патогенною грамнега тивною мікрофлорою. Це підкреслює необхідність регулярного мікробіологічного моніторингу, застосування сучасних методів діагностики та комплексного підходу до лікування і профілактики маститу у молочних стадах.

Ключові слова: мастит у корів, збудники маститу, Staphylococcus aureus, Streptococcus agalactiae, Escherichia coli, бактеріологічний посів, антибіотикотерапія, антибіотикорезистентність, профілактика маститу.

ЧЕМЕРОВСЬКА І.О. https://orcid.org/0000-0002-7291-6400


РУБЛЕНКО І.О.


ЗОЦЕНКО В.М. https://orcid.org/0000-0001-8908-6688


ТІТАРЕНКО О.В. https://orcid.org/0000-0002-7370-8523


  1. Rainard, P. (2017). Mammary microbiota of dairy ruminants: fact or fiction? Veterinary Research, Vol. 48, no. 1, 25 p. DOI:10.1186/s13567017-0429-2.
  2. Al-Farha, A.B., Hemmatzadeh, F., Khazandi, M. (2017). Evaluation of effects of Mycoplasma mastitis on milk composition in dairy cattle from South Australia. BMC Veterinary Research, Vol. 13, 351 p. DOI:10.1186/s12917-017-1274-2.
  3. Reinoso, E.B. (2017). Bovine mastitis caused by Streptococcus uberis: virulence factors and biofilm. Journal of Microbial&Biochemical Technology, Vol. 9 (5), pp. 237–243. DOI:10.4172/19485948.1000371.
  4. Keefe, G.P. (2018). Update on control of Staph ylococcus aureus and Streptococcus agalactiae mastitis in dairy herds. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract., Vol. 34 (3), pp. 491–505. DOI:10.1016/j.cvfa.2018.07.002.
  5. Srednik, M.E., Raspanti, C.G., Andreotti, C.S. (2018). Antimicrobial resistance and virulence factors in Staphylococcus aureus isolates from bovine mastitis in Argentina. Microbial Pathogenesis, Vol. 124, pp. 97–104. DOI:10.1016/j.micpath.2018.08.021.
  6. Zadoks, R.N., Middleton, J.R., McDougall, S. (2018). Molecular epidemiology of mastitis pathogens and the role of genomics. Veterinary Microbiology, Vol. 214, pp. 84–91. DOI:10.1016/j.vetmic.2017.12.031.
  7. Tomazi, T., Gonçalves, J.L., Nascimento, C.S. (2018). Identification of coagulase-negative staphylococci from bovine mastitis using MALDI-TOF MS. J. Dairy Sci., Vol. 101 (3), pp. 2925–2934. DOI:10.3168/jds.2017-13890.
  8. Ruegg, P.L. (2017). A 100-year review: mastitis detection, management, and prevention. J. Dairy Sci., Vol. 100 (12), pp. 10381–10397. DOI:10.3168/jds.2017-13023.
  9. Vakkamäki, J., Taponen, S., Koort, J., Pyörälä, S. (2017). Bovine mastitis in Finland: etiology and treatment outcomes. Acta Vet. Scand., Vol. 59, 60 p. DOI:10.1186/s13028-017-0323-4.
  10. Hogeveen, H., Huijps, K., Lam, T. (2019). Economic aspects of mastitis: new developments. NZ Vet. J., Vol. 67 (6), pp. 332–340. DOI:10.1080/00480169.2019.1656596.
  11. Feng, Y., Huang, X., Shi, C. (2020). Prevalence and antimicrobial resistance of major pathogens from bovine mastitis in China. Front. Vet. Sci., Vol. 7, 418. DOI:10.3389/fvets.2020. 00418.
  12. Wente, N., Zoche-Golob, V., Vries, M.De. (2019). Association between pathogens and clinical forms of mastitis. Vet. Microbiol., Vol. 235, pp. 79 87. DOI:10.1016/j.vetmic.2019.06. 002.
  13. Ashraf, A., Imran, M. (2018). Diagnosis of bovine mastitis: from laboratory to farm. Trop. Anim. Health Prod., Vol. 50 (6), pp. 1193–1202. DOI:10.1007/s11250-018-1552-8.
  14. Kaczorek-Łukowska, E., Małaczewska, J. (2021). Biofilm formation and antimicrobial resistance of S. aureus and S. uberis isolates from bovine mastitis. Animals (Basel), Vol. 11 (4), 170 p. DOI:10.3390/ani11061704.
  15. Supré, K., Haesebrouck, F. (2020). Importance of coagulase-negative staphylococci in bovine mastitis. Pathogens, Vol. 9 (1), 39 p. DOI:10.3390/pathogens9010039.
  16. Morales-Anaya, J., Krömker, V. (2021). Molecular mechanisms of mastitis pathogenesis in dairy cows. Microorganisms, Vol. 9 (5), 1099 p. DOI:10.3390/microorganisms9051099.
  17. Yang, F., Li, X., Li, M. (2019). Antimicrobial resistance and biofi lm formation of E. coli isolated from bovine mastitis. Front. Microbiol, Vol. 10, 208 p. DOI:10.3389/fmicb.2019.00208.
  18. Dordet-Frisoni, E., Pasquali, P., Guérin-Fauthoux, E. (2018). Whole-genome sequencing of S. aureus from bovine mastitis. BMC Genomics, Vol. 19, 478 p. DOI:10.1186/s12864-018-4878-3.
  19. Pol, M., Ruegg, P.L. (2019). Treatment practices and antibiotic usage for mastitis. Prev. Vet. Med., Vol. 165, pp. 102–112. DOI:10.1016/j.prevetmed.2019.02.010.
  20. Barkema, H.W., Green, M.J., Bradley, A.J. (2022). Role of S. aureus in bovine mastitis pathogenesis. Front. Vet. Sci., Vol. 9, 871 p. DOI:10.3389/fvets.2022.00871.
  21. Leelahapongsathon, K., Suriyasathaporn, W. (2020). New diagnostic approaches for subclinical mastitis. Animals (Basel), Vol. 10 (11), 2056 p. DOI:10.3390/ani10112056.
  22. Tomazi, T., Rossi, R.S., Gonçalves, J.L. (2021). Use of PCR for rapid detection of mastitis pathogens. J. Dairy Sci., Vol. 104 (2), pp. 1906–1916. DOI:10.3168/jds.2020-18876.
  23. Fadlelmoula, A., Nasr, M.A. (2019). Influence of management factors on mastitis prevalence. Trop. Anim. Health Prod., Vol. 51 (4), pp. 855–862. DOI:10.1007/s11250-018-1772-y.
  24. Gomes, F., Henriques, M. (2016). Control of bovine mastitis: old and recent therapies. Front. Microbiol., Vol. 7, 272 p. DOI:10.3389/fmicb.2016.00272.
  25. Zemanová, M., Langová, L., Novotná, I. (2022). Immune mechanisms and resistance genes in prevention of mastitis. Arch. Anim. Breed., Vol. 65 (4), pp. 371–382. DOI:10.5194/aab-65 -371-2022.
  26. Kerro Dego, O., Vidlund, S. (2024). Staphylococcal mastitis in dairy cows: epidemiology and control. Front. Vet. Sci., Vol. 11, 1042 p. DOI:10.3389/fvets.2024.01042.
  27. Benitez-Cabello, A., Morales, P., Rodriguez-Maresca, M. (2023). Detection of mastitis pathogens by real-time PCR. Pathogens, Vol. 12 (6), 812 p. DOI:10.3390/pathogens12060812.
  28. Tong, X., Barkema, H.W., Nobrega, D.B., Xu, C., Han, B., Zhang C., Yang, J., Li, X., Gao, J. (2025). Virulence of Bacteria Causing Mastitis in Dairy Cows: A Literature Review. MDPI Microorganisms, Vol. 13, no. 1, 167 p. DOI:10.3390/microorganisms13010167.
  29. Cunha, M.L.R.S., Silva, L.A., Mendonça, E.C. (2022). Antimicrobial susceptibility of mastitis pathogens from Brazilian dairy herds. Brazilian J. Microbiol., Vol. 53 (2), pp. 1133–1144. DOI:10.1007/s42770-021-00678-4.
  30. Nashwa, M., El-Hofy, H., Ibrahim, A. (2025). Genetic determinants of antimicrobial resistance in bovine mastitis isolates. Veterinary World, Vol. 18 (2), pp. 225–234. DOI:10.14202/ vetworld.2025.225-234
  31. National mastitis council. Laboratory handbook on bovine mastitis. (2017). Madison (WI): National mastitis counil.
  32. Vasylkiv, O., Kukhtin, M. (2024). Identification of mastitis pathogens in cows. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Veterinary Sciences, Vol. 26, no. 115, pp. 51–56. DOI:10.32718/nvlvet11507. (In Ukrainian).
  33. Radzikhovsky, N., Deishkan, O. (2023). Methods for diagnosing infectious mastitis in cattle. Scientific and Technical Bulletin of State Scientific Research Control Institute of Veterinary Medical Products and Fodder Additives and Institute of Animal Biology, Vol. 24, no. 1, pp. 157–162. DOI:10.15421/scivp24123. (In Ukrainian).
  34. Horiuk, Y., Kukhtyn, M., Perkiy, Y., Horiuk, V. (2018). Distribution of main pathogens of mastitis in cows on dairy farms in the western region of Ukraine. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Veterinary Sciences, Vol. 20, no. 83, pp. 115–119. DOI:10.15421/nvlvet8322.
  35. Vasylkiv, O., Kukhtyn, M. (2024). Identification of causative agents of cow mastitis in farms of Ternopil region. Scientifi c Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. Veterinary Sciences, Vol. 26, no. 115, pp. 51–56. DOI:10.32718/nvlvet11507.
ДолученняРозмір
PDF icon chemerovska_1_2026_.pdf1.1 МБ
Науковий вісник ветеринарної медицини № 1'2026