Ви є тут

Визначення чутливості до антибіотиків у ізолятів, виділених від собак та котів

Мікроорганізми здатні швидко набувати антибіотикорезистентності через мутацію, передачу генів-пам’яті та епігенетичних змін. Різні чинники впливають на поширення стійких до антибіотиків бактерій у сфері охорони здоров’я, сільському господарстві/тваринництві та навколишньому середовищі за їх нераціонального, надмірного використання. Ці стійкі мікроорганізми (Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Proteus spp.) та їх гени потрапляють у ґрунт, повітря, воду, сільськогосподарські відходи, очисні споруди і поширюються у навколишньому середовищі. Особливо небезпечними є збудники-зоонози. Вчені та практикуючі лікарі розробляють глобальні стратегії, які насамперед включають удосконалення ідентифікації та моніторингу поширення стійких патогенів. Метою досліджень було визначити у мікроорганізмів, виділених від тварин-компаньйонів, чутливість до антибактеріальних препаратів. Для мікробіологічного дослідження відібрано біологічний матеріал, за різних інфекційних процесів. Визначено у ізолятів Staphylococcus aureus резистентність до різних антибіотиків. Зокрема, найбільш резистентними виявилися ізоляти до цефтріаксону (7,14 %), цефазоліну (5,36 %) та ампіциліну (5,36 %). За дослідження ізолятів Staphylococcus aureus найвищу резистентність встановлено до еритроміцину, лінкоміцину що вірогідно вище (р<0,001) у порівнянні із отриманими показниками резистентності до тетрацикліну та цефтріаксону. У виділених ізолятів Staphylococcus epidermidis виявили резистентність до гентаміцину, еритроміцину, лінкоміцину, цефатоксину, ампіциліну, що вірогідно (р<0,001) вище у порівнянні із отриманими даними резистентності до тетрацикліну, ципрофлоксацину, цефтріаксону. Найбільш резистентними ізоляти E. coli виявилися до лінкоміцину (10,34 %), цефтріаксону (10,34 %), тетрацикліну (8,62 %) та норфлоксацину (8,62 %).

Ключові слова: антибіотикорезистентність, антибіотики, поширення, мікроорганізми, Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Proteus spp., собаки, коти.

  1. Tillotson G.S., Zinner S.H. Burden of antimicrobial resistance in an era of decreasing susceptibility. Expert. Rev. Anti. Infect. Ther. 2017. Vol. 15. No 10. Р. 663–676. DOI:10.1080/14787210.2017.1337508.
  2. EUCAST. Щодо визначення механізмів резистентності та специфічної резистентності, що має клінічне та/або епідеміологічне значення. 2013. URL:www.eucast.org.
  3. Kim B.K., Hwang H.C., Wang S.H., Choi S.R. Characterization of mcr-1-harboring plasmids from pan drug-resistant Escherichia coli strains isolated from retail raw chicken in South Korea. Microorganisms. 2019. Vol. 7. No 9. Р. 344–355. DOI:10.3390/microorganisms7090344.
  4. Prevalence and characterization of Staphylococcus aureus Foodborne Pathog / V.J. Velasco et al. Clinical microbiology reviews. 2018. Vol. 2. No 15. P. 262–268. DOI:10.1089/fpd.2017.2381.
  5. Prevalence of methicillin-resistant Staphylococcus aureus and other Staphylococcus species in raw meat samples intended for human consumption in Benin City, Nigeria: implications for public health / E.O. Igbinosa et al. Environ Res Public Health. 2016. Vol. 8. No 13. 949 p. DOI:10.3390/ijerph13100949.
  6. Bourne J.A., Chong W.L., Gordon D.M. Genetic Structure, Antimicrobial Resistance and Frequency of Human Associated Escherichia coli Sequence Types among Faecal Isolates from Healthy Dogs and Cats Living in Canberra, Australia. PLoS ONE. 2019. Vol. 2. No 14. P. 276–312. DOI:10.1371/journal.pone.0212867.
  7. Development and Transmission of Antimicrobial Resistance among Gram-Negative Bacteria in Animals and Their Public Health Impact / S.O. Mukerji et al. Essays Biochem. 2017. Vol. 9. No 61. P. 23–35. DOI:10.1042/ebc20160055.
  8. Hata A.О., Fujitani N.С., Yoshikawa Y.В. Surveillance of Antimicrobial-Resistant Escherichia coli in Sheltered Dogs in the Kanto Region of Japan. Sci. Rep. 2022. Vol. 6. No 12. 773 p. DOI:41598-021-04435-w.
  9. Akhtardanesh B.H., Ghanbarpour R.R., Ganjalikhani S.P., Gazanfari P.A. Determination of Antibiotic Resistance Genes in Relation to Phylogenetic Background in Escherichia coli Isolates from Fecal Samples of Healthy Pet Cats in Kerman City. Vet. Res. Forum Int. Q. 2016. Vol. 2. No 5. P. 301–308.
  10. Carriage of Antimicrobial Resistant Escherichia coli in Dogs: Prevalence, Associated Risk Factors and Molecular Characteristics / A.L. Wedley et al. Vet. Microbiol. 2017. Vol. 8. No 199. P. 23–30. DOI:10.1016/j.vetmic.2016.11.017.
  11. Risk factors for nasal colonization by methicillin-resistant staphylococci in healthy humans in professional daily contact with companion animals in Portugal / A.C. Rodrigues et al. Microb Drug Resist. 2018. Vol. 24. No 4. Р. 434–46. DOI:10.1089/mdr.2017.0063.
  12. Clonally diverse methicillin and multidrug resistant coagulase negative staphylococci are ubiquitous and pose transfer ability between pets and their owners / E.O. Gómez-Sanz et al. Front Microbiol. 2019. Vol. 6. No 10. 56 p. DOI:10.3389/fmicb.2019.00485.
  13. Maali Y.D., Badiou C.T., Martins-Simões P.B., Hodille E.B. Understanding the virulence of staphylococcus pseudintermedius: a major role of pore-forming toxins. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2018. Vol. 8. No 1. 221 p. DOI:10.3389/fcimb.2018.00221.
  14. Corrò M.L., Skarin J.T., Börjesson S.D., Rota A.P. Occurrence and characterization of methicillin-resistant Staphylococcus pseudintermedius in successive parturitions of bitches and their puppies in two kennels in Italy. BMC Vet Res. 2018. Vol. 14. No 1. 308 p. DOI:10.1186/s12917-018-1612-z.
  15. The trend of resistance to antibiotics for ocular infection of Staphylococcus aureus, coagulase-negative staphylococci, and Corynebacterium compared with 10-years previous: a retrospective observational study / H.G. Deguchi et al. PLoS One. 2018. Vol. 13. No 9. 175 p. DOI:10.1371/journal.pone.0203705.
  16. Abdel-Moein K.A., Zaher H.M. The nasal carriage of coagulase-negative staphylococci among animals and its public health implication. Vector Borne Zoonotic Dis. 2020. Vol. 29. No 12. Р. 897– 902. DOI:10.1089/vbz.2020.2656.
  17. Detection of SGI1/PGI1 elements and resistance to extended-spectrum cephalosporins in Proteae of animal origin in France / E.D. Schultz et al. Front. Microbiol. 2017. Vol. 8. No 32. Р. 56–62. DOI:10.3389/fmicb.2017.00032.
  18. NusG-Dependent RNA polymerase pausing and tylosin-dependent ribosome stalling are required for tylosin resistance by inducing 23S rRNA methylation in Bacillus subtilis / H.А. Yakhnin et al. mBio. 2019. Vol. 10. No 16. Р. 19–22. DOI:10.1128/mbio.02665-19.
  19. Салманов А.Г. Боротьба з антимікробною резистентністю: план дій України. Практика управління закладом охорони здоров’я. 2019. №11. С. 37–54.
  20. МЕБ. Визначення антибіотикорезистентності. 2019. 21 с. URL:https://www.who.int/ukraine/uk/publications/9789241516822.
  21. EUCAST. European committee on antimicrobial susceptibility testing. SOP, 2021. 34 p.
  22. Hassoun A.O., Linden P.K., Friedman B.D. Incidence, prevalence, and management of MRSA bacteremia across patient populations a review of recent developments in MRSA management and treatment. Crit Care. 2017. Vol. 17. No 21. 211 p. DOI:10.1186/s13054-017-1801-3.
  23. ECDC Surveillance of antimicrobial resistance in Europe 2018, Stockholm: European Centre for Disease Prevention and Control. 2019. URL:https:// www.ecdc.europa.eu/en/publications-data/surveillance-antimicrobial-resis....
  24. FOPH Swiss Antibiotic Resistance Report. Usage of Antibiotics and Occurrence of Antibiotic Resistance in Bacteria from Humans and Animals in Switzerland. 2018. URL: https://www.academia.edu/87287533/Swiss_antibiotic_resistance_report_201... animals_in_Switzerland.
  25. Analysis of the spectrum and antibiotic resistance of uropathogens in outpatients at a tertiary hospital / B.K. Yang et al. Journal of Chemotherapy. 2018. Vol. 30. No 3. P. 145–149. DOI:10.1080/11200 09X.2017.1418646.
  26. Antimicrobial resistance in community-acquired urinary tract infections in Paris in 2015 / D.M. Chervet et al. Médecine et Maladies Infectieuses. 2017. Vol. 48. No 3. P. 188–192. DOI:10.1016/j.medmal.2017.09.013.
  27. Seitz M.K., Stief C.Y., Waidelich R.H. Local epidemiology and resistance profiles in acute uncomplicated cystitis (AUC) in women: A prospective cohort study in an urban urological ambulatory setting. BMC Infectious Diseases. 2017. Vol. 17. No 7. URl:https://bmcinfectdis.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12879-017-2789-7.
  28.  Theuretzbacher Global priority list of antibiotic-resistant bacteria to guide research, discovery, and development of new antibiotics / N.K. Tacconelli et al. World Health Organization. 2017. Vol. 4. No 8. P. 1–7. DOI:10.1016/s1473-3099(17)30753-3.
ДолученняРозмір
PDF icon chemerovska_2_2024.pdf4.97 МБ