Ви є тут

Головна » Науковий вісник ветеринарної медицини № 1'2026

Вплив кормової добавки Харуфікс+ на морфофункціональний стан печінки та нирок свиней за мікотоксикозу

У статті представлено результати комплексного дослідження гепатопротекторної та нефропротекторної ефективності кормової добавки Харуфікс+ за умов асоційованого експериментального мікотоксикозу в поросят після відлучення. Проблема поєднаного впливу мікотоксинів є надзвичайно актуальною, оскільки вона спричиняє глибокі деструктивні зміни в органах, що підтверджено проведеним аналізом. Внаслідок токсикобіологічної дії асоціації мікотоксинів (T-2 токсин у концентрації 0,1 мг/кг, фумонізин B1 – 0,5 мг/кг, вомітоксин (ДОН) – 0,1 мг/кг, пеніцилова кислота – 1 мг/кг) у поросят розвивавася комплексний патологічний процес. Встановлено, що споживання контамінованого корму без застосування детоксиканта призводить до розвитку гострої застійної гіперемії, білкової зернистої дистрофії гепатоцитів, каріорексису та нерівномірної інфільтрації паренхіми печінки клітинами запалення. У окремих тварин зафіксовано ознаки початкового етапу атрофічного цирозу з формуванням несправжніх часточок. Гістологічні деструкції корелювали з біохімічними змінами крові: відмічено вірогідне зростання активності АлАТ до 1,98 ммоль/(год×л), що свідчить про руйнування цитозольних структур клітин, а також порушення ліпідного профілю (підвищення рівня холестеролу та триацилгліцеролів). Нефротоксична дія проявилася зниженням фільтраційної здатності нефронів, що підтверджувалося підвищенням вмісту сечовини та креатиніну в сироватці крові поросят третьої групи. Доведено, що включення до раціону добавки Харуфікс+ дозволяє зберегти оптимальну гістоархітектоніку печінки: проглядається чітка радіальна будова часточок, а цитоплазма гепатоцитів має інтенсивне базофільне насичення. Застосування препарату забезпечило зниження активності АлАТ на 10,6 % порівняно з групою без детоксиканта, що вказує на стабілізацію клітинних мембран. Особливу увагу приділено здатності Харуфіксу+ оптимізувати білоксинтезувальну функцію гепатоцитів, що відобразилося у вірогідному зростанні рівня загального білка (до 56,2 г/л) та альбумінів. Показники ліпідного обміну в групі із застосуванням добавки були стабільнішими, а функціональний стан нирок залишався в межах норми, що свідчить про виражений нефропротекторний ефект. Зроблено висновок, що Харуфікс+ ефективно перешкоджає проникненню мікотоксинів із травного каналу в кров, нівелює їх цитотоксичний вплив та сприяє підтримці метаболічного гомеостазу в організмі поросят. Наукова новизна результатів полягає у підтвердженні комплексного захисного впливу добавки на основі органічних маннанолігосахаридів на структуру та функцію вну трішніх органів за умов мультитоксикозу.

Ключові слова: поросята, асоційований мікотоксикоз, печінка, нирки, гепатотоксична дія, нефропротекторний вплив, гістоло гічні зміни, біохімічні показники крові, детоксикація.

ВОВКОТРУБ Н.В. https://orcid.org/0000-0003-3297-454X


МЕЛЬНИК А.Ю. https://orcid.org/0000-0001-9129-4814


ЧУБ О.В.


ПІДДУБНЯК О.В. https://orcid.org/0000-0001-9071-2041


ТИШКІВСЬКИЙ М.Я. https://orcid.org/0000-0003-0826-5276


АНДРІЙЧУК А.В.


  1. Eshelli, M., Qader, M.M., Jambi, E.J., Hursthouse, A.S., Rateb, M.E. (2018). Current status and future opportunities of omics tools in mycotoxin research. Toxins, 10, 433 p. DOI:10.3390/toxins 10110433.
  2. Peles, F., Sipos, P., Gyori, Z., Pfl iegler, W.P., Giacometti, F., Serraino, A., Pagliuca, G., Gazzotti, T., Pócsi, I. (2019). Adverse eff ects, transformation and channeling of afl atoxins into food raw materials in livestock. Frontiers in Microbiology, 10, pp. 1–26. DOI:10.3389/fmicb.2019. 02861.
  3. Buszewska-Forajta, M. (2020). Mycotoxins, invisible danger of feedstuff with toxic effect on animals. Toxicon, 182, pp. 34–53. DOI:10.1016/j.toxi con.2020.04.10.
  4. Eskola, M., Kos, G., Elliott, C.T., Hajšlová, J., Mayar, S., Krska, R. (2020). Worldwide contamination of food-crops with mycotoxins: Validity of the widely cited ‘FAO estimate’ of 25%. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 60, pp. 2773–2789. DOI:10.1080/10408398.2019.1658570.
  5. FAO. (2001). Manual on the Application of the HACCP System in Mycotoxin Prevention and Control. FAO: Rome, Italy.
  6. FAO/WHO Codex Alimentarius. Code of Practice for the Prevention and Reduction of Mycotoxin Contamination in Cereals (CAC/RCP 51-2003). Adopted 2003. Revised 2014. 2014. Available at:http://www.fao.org/fao-who-codexalimentarius/sh-proxy/en/?lnk=1&url=http... 52Fworkspace.fao.org%252Fsites%252Fcodex%252FStandards%252FC XC%2B51-2003%252FCXC_0 51e. pdf (accessed on 18 June 2021).
  7. Gruber-Dorninger, C., Jenkins, T., Schatzmayr, G. (2019). Global mycotoxin occurrence in feed: a ten-year survey. Toxins (Basel), 11 (7), 375 p. DOI:10.3390/toxins11070375.
  8. Veldman, B. (2004). Mycotoxins in the animal production chain. In meeting the mycotoxin menace. Wageningen Academic Publishers: Wageningen, The Netherlands, pp. 275–280.
  9. Schatzmayr, G., Zehner, F., Taubel, M., Schatzmayr, D., Klimitsch, A., Loibner, A.P., Binder, E.M. (2006). Microbiologicals for deactivating mycotoxins. Molecular Nutrition and Food Research, 50, pp. 543–551. DOI:10.1002/mnfr.200500181.
  10. Fumagalli, F., Ottoboni, M., Pinotti, L., Cheli, F. (2021). Integrated mycotoxin management system in the feed supply chain: innovative approaches. Toxins, 13, 572 p. DOI:10.33 90/toxins13080572.
  11. Richard, J.L. (2007). Some major mycotoxins and their mycotoxicoses: An overview. International Journal of Food Microbiology, 119, pp. 3–10. DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2007.07.019
  12. Goyarts, T., Danicke, S., Rothkotter, H.J., Spilke, J., Tiemann, U., Schollenberger, M. (2005). On the effects of a chronic deoxynivalenol intoxication on performance, haematological and serum parameters of pigs when diets are offered either for ad libitum consumption or fed restrictively. Journal of Veterinary Medicine, 52, pp. 305–314. DOI:10.1111/j.1439-0442.2005.00734.x
  13. Meissonnier, G.M., Pinton, P., Laffi tte, J., Cossalter, A., Gong, Y.Y., Wild, C.P., Bertin, G., Galtier, P., Oswald, I.P. (2008). Immunotoxicity of afl atoxin B1: Impa1irment of the cell-mediated response to vaccine antigen and modulation of cytokine expression. Toxicology and Applied Pharmacology, 231, pp. 142–149. DOI:10.1016/j.taap.2008.04.004
  14. Chaytor, A.C., See, M.T., Hansen, J.A., de Souza, A.L.P., Middleton, T.F., Kim, S.W. (2011). Effects of chronic exposure of diets with reduced concentrations of afl atoxin and deoxynivalenol on growth and immune status of pigs. Journal of Animal Science, 89, pp. 124–135. DOI:10.2527/jas.2010-3005
  15. Council for Agricultural Science and Technology. (2003). Mycotoxins: Risks in Plant, Animal, and Human Systems, Task Force Report. Council for Agricultural Science and Technology: Ames, IA, USA, no. 139.
  16. Miazzo, R., Peralta, M.F., Magnoli, C., Salvano, M., Ferrero, S., Chiacchiera, S.M., Carvalho, E.C.Q., Rosa, C.A.R., Dalcero, A. (2005). Efficacy of sodium bentonite as a detoxifi er of broiler feed contaminated with afl atoxin and fumonisin. Poultry Science, 84, pp. 1–8. DOI:10.1093/ps/84.1.1
  17. Kępińska-Pacelik, J., Biel, W. (2021). Alimentary risk of mycotoxins for humans and animals. Toxins, 13, 822 p. DOI:10.3390/toxins13110822.
  18. Ráduly, Z., Szabó, A., Mézes, M., Balatoni, I., Price, R.G., Dockrell, M.E., Pócsi, I., Csernoch, L. (2023). New perspectives in application of kidney biomarkers in mycotoxin induced nephrotoxicity, with a particular focus on domestic pigs. Frontiers in Microbiology, 14. DOI:10.3389/fmicb.2023.108581.
  19. Kihal, А., Rodríguez-Prado, М., Calsamiglia, S. (2022). The efficacy of mycotoxin binders to control mycotoxins in feeds and the potential risk of interactions with nutrient: a review, Journal of Animal Science, 100 (11), 328p. DOI:10.1093/jas/skac328.
  20. Singh, R., Saini, A. (2020). Effect of Diato maceous Earth (DE) to Ameliorate Adverse Effects of Aflatoxin B 1 on In Vitro Rumen Fermentation of a Buffalo Diet. Veterinary Research International, 18 (2), pp. 154–159.
  21. Van der Peet-Schwering, C.M.C., Jansman, A.J.M., Smidt, H., Yoon, I. (2007). Effects of yeast culture on performance, gut integrity, and blood cell composition of weanling pigs. Journal of Animal Science, 85, pp. 3099–3109. DOI:10.2527/jas.2007-0110
  22. Huwig, A., Freimund, S., Kappeli, O., Dutler, H. (2001). Mycotoxin detoxifi cation of animal feed by diff erent absorbents. Toxicology Letters, 122, pp. 179–188. DOI:10.1016/s0378-4274(01)00360-5
  23. Chaytor, A.C., Hansen, J.A., van Heugten, E., See, M.T., Kim, S.W. (2011). Occurrence and decontamination of mycotoxins in swine feed. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 24, pp. 723 738. DOI:10.5713/ajas.2011.10358
  24. Holanda, D.M., Kim, S.W. (2021). Mycotoxin occurrence, toxicity, and detoxifying agents in pig production with an emphasis on deoxynivalenol. Toxins, 13, 171 p. DOI:10.3390/ toxins13020171.
  25. Tassis, P., Pierron, A., Kauffold, J. (2025). Editorial: Mycotoxins in pig feed: health risks, reproductive impacts, and diagnostic innovations. Frontiers in Veterinary Science, 12. DOI:10.33 89/fvets.2025.1675111.
  26. Malczak, I., Gajda, A., Jedziniak, P. (2025). Deoxynivalenol and pigs: review of harmful effect of Mycotoxin on swine health. Porcine Health Management, 11, 27 p. DOI:10.1186/s40813-025-00441-w.
  27. Smith, M.C., Madec, S., Coton, E., Hymery, N. (2016). Natural co-occurrence of mycotoxins in foods and feeds and their in vitro combined toxicological effects. Toxins, 8, 94 p. DOI:10.3390/toxins80 40094
  28. Quiroga, M.A., Risso, M.A., Perfumo, C.J. (2009). T-2 mycotoxin intoxication in piglets: a systematic pathological approach and apoptotic immunohistochemical studies. Brazilian Journal of Veterinary Pathology, 2 (1), pp. 16–22. DOI:10.24070/bjvp.1983-0246.002004.
  29. Riley, R.T., Merrill, A.H. (2019). Ceramide synthase inhibition by fumonisins: a perfect storm of perturbed sphingolipid metabolism, signaling, and disease. Journal of Lipid Research, 60 (7), pp. 1183 1189. DOI:10.1194/jlr.S093815.
  30. Enongene, E.N., Sharma, R.P., Bhandari, N., Miller, J.D., Meredith, F.I., Voss, K.A., Riley, R.T. (2002). Persistence and reversibility of the elevation in free sphingoid bases induced by fumonisin inhibition of ceramide synthase. Toxicological Sciences, 67, pp. 173–181. DOI:10.1093/toxsci/67.2.173.
  31. Weaver, A.C., See, M.T., Kim, S.W. (2014). Protective effect of two yeast based feed additives on pigs chronically exposed to deoxynivalenol and zearalenone. Toxins, 6, pp. 3336–3353. DOI:10.3390/toxins6123336.
  32. Gerez, J.R., Pinton, P., Callu, P., Grosjean, F., Oswald, I.P., Bracarense, A.P.F. (2015). Deoxynivalenol alone or in combination with nivalenol and zearalenone induce systemic histological changes in pigs. Experimental and Toxicologic Pathology, 67, pp. 89–98. DOI:10.1016/j.etp.2014.10.001.
  33. Tiemann, U., Brüssow, K.P., Küchenmeister, U., Jonas L., Kohlschein, P., Pöhland, R., Dänicke, S. (2006). Infl uence of diets with cereal grains contaminated by graded levels of two Fusarium toxins on selected enzymatic and histological parameters of liver in gilts. Food and Chemical Toxicology, 44 (8), pp. 1228–1235. DOI:10.1016/j.fct.2006.01.021.
  34. Horky, P., Nevrkla, P., Kopec, T., Bano, I., Skoric, M., Skladanka, J., Skalickova1, S. (2022). Is a new generation of mycotoxin clay adsorbents safe in a pig’s diet? Porcine Health Management, 8, 31 p. DOI:10.1186/s40813-022-00275-w.
  35. Zeebone, Y.Y., Bóta, B., Halas, V., Libisch, B., Olasz, F., Papp, P., Keresztény, T., Gerőcs, A., Ali, O., Kovács, M., Szabó, A. (2023). Gut-faecal microbial and health-marker response to dietary fumonisins in weaned pigs. Toxins, 15 (5), 328 p. DOI:10.3390/toxins15050328.
  36. Wea ver, A., Hansen, J., Heugten, E., See, M., Kim, S. (2011). Occurrence and decontamination of mycotoxins in swine feed. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 24, pp. 723–738. DOI:10.5713/ajas.2011.10358.
  37. Bin-Umer, M.A., McLaughlin, J.E., Basu, D., McCormick, S., Tumer, N.E. (2011). Trichothecene mycotoxins inhibit mitochondrial translation implication for the mechanism of toxicity. Toxins, 3 (12), pp. 1484–1501. DOI:10.3390/toxins3121484.
  38. Hamid, A.S., Tesfamariam, I.G., Zhang, Y., Zhang, Z.G. (2013). Aflatoxin B1-induced hepatocellular carcinoma in developing countries: geographical distribution, mechanism of action and prevention. Oncology letters, 5, pp. 1087–1092. DOI:10.3892/ol.2013.1169
  39. Heikkinen, T., Küblbeck, J. Rysä, J. (2025). Metabolic disruption by mycotoxins: focus on metabolic endpoints steatosis, adipogenesis and glucose metabolism in vivo and in vitro. Archives of Toxicology, 99, pp. 1749–1767. DOI:10.1007/s00204 025-03957-w.
  40. Xu, Z., Liu, D., Liu, D., Ren, X., Liu, H., Qi, G., Zhou, Y., Wu, C., Zhu, K., Zou, Z., Yuan, J., Lin, W., Guo, P. (2022). Equisetin is an anti-obesity candidate through targeting 11β-HSD1. Acta Pharmaceutica Sinica B, 12, pp. 2358–2373. DOI:10.1016/j.apsb.2022.01.006.
  41. Dopavogui, L., Régnier, M., Polizzi, A., Ponchon, Q., Smati, S., Klement, W., Lasserre, F., Lukowicz, C., Lippi, Y., Fougerat, A., Bertrand-Michel, J., Naylies, C., Canlet, C., Debrauwer, L., Rousseau-Bacquié, E., Gamet-Payrastre, L., Dauriat, C., Casas, J., Croubels, S., De Baere, S, Burger, H.M., Chassaing, B., Ellero-Simatos, S., Guillou, H., Oswald, I.P., Loiseau, N. (2023). Obesity promotes fumonisin B1 hepatotoxicity. Science of the Total Environment, 15, 891 p. DOI:10.1016/j.scito tenv.2023.164436.
  42. Fang, J.Y., Huang, T.H., Chen, W.J., Al juff ali, I.A., Hsu, C.Y. (2022). Rhubarb hydroxyanthraquinones act as antiobesity agents to inhibit adipogenesis and enhance lipolysis. Biomedicine and Pharmacotherapy, 146. DOI:10.1016/j.bio pha.2021.112497.
  43. Shen, C., Pan, Z., Wu, S., Zheng, M., Zhong, C., Xin, X., Lan, S., Zhu, Z., Liu, M., Wu, H., Huang, Q., Zhang, J., Liu, Z., Si, Y., Tu, H., Deng, Z., Yu, Y., Liu, H., Zhong, Y., Guo, J., Cai, J., Xian, S. (2021). Emodin palliates high-fat diet induced nonalcoholic fatty liver disease in mice via activating the farnesoid X receptor pathway. Journal of Ethnopharmacology, 28, 279 p. DOI:10.1016/ j.jep.2021.114340.
  44. Wang, J., Qu, J., Liu, S., Li, X., Zhu, Y., Liu, X., Yi, J., Yuan, Z., Huang, P., Yin, Y., Wen, L., Wu, J. (2023). Tannic acid ameliorates systemic glucose and lipid metabolic impairment induced by low-dose T-2 toxin exposure. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 71 (33), pp. 12574–12586. DOI:10.1021/acs.jafc.3c029 34.
  45. Barbouche, R., Gaigé, S., Airault, C., Poirot, K., Dallaporta, M., Troadec, J.D., Abysique, A. (2020). The food contaminant deoxynivalenol provokes metabolic impairments resulting in non alcoholic fatty liver (NAFL) in mice. Scientifi c Reports, 10 (1), 12072 p. DOI:10.1038/s41598-020-68712-w.
  46. Zong, Q., Qu, H., Zhao, Y., Liu, H., Wu, S., Wang, S., Bao, W., Cai, D. (2022). Sodium butyrate alleviates deoxynivalenol-induced hepatic cholesterol metabolic dysfunction via RORγ-mediated histone acetylation modifi cation in weaning piglets. Journal of Animal Science and Biotechnology, 13, 33 p. DOI:10.1186/s40104-022-00793-1.
  47. Alisi, A., Pastore, A., Ceccarelli, S., Panera, N., Gnani, D., Bruscalupi, G., Massimi, M., Tozzi, G., Piemonte, F., Nobili, V. (2012). Emodin prevents intrahepatic fat accumulation, inflammation and redox status imbalance during diet-induced hepatosteatosis in rats. International Journal of Molecular Sciences, 13, pp. 2276–2289. DOI:10.3390/ijms13022276.
  48. Yu, F., Yu., N, Peng J., Zhao, Y., Zhang, L., Wang, X., Xu, X., Zhou, J., Wang, F. (2021). Emodin inhibits lipid accumulation and inflammation in adipose tissue of high-fat diet-fed mice by inducing M2 polarization of adipose tissue macrophages. The FASEB Journal, 35 (7). DOI:10.1096/fj.202100157RR.
  49. Kobayashi-Hattori, K., Amuzie, C.J., Flannery, B.M., Pestka, J.J. (2011). Body composition and hormonal effects following exposure to mycotoxin deoxynivalenol in the high-fat diet-induced obese mouse. Molecular Nutrition and Food Research, 55, pp. 1070–1078. DOI:10.1002/mnfr.201000640.
  50. Ráduly, Z., Price, R.G., Dockrell, M.E.C., Csernoch, L., Pócsi, I. (2021). Urinary biomarkers of mycotoxin induced nephrotoxicity – current status and expected future trends. Toxins, 13, 848 p. DOI:10.3390/toxins13120848.
  51. Raj, J., Tassis, P., Männer, K., Farkaš, H., Jakovčević, Z., Vasiljević, M. (2025). Effects of a multicomponent mycotoxin detoxifying agent on health and performance of weaned pigs under combined dietary exposure to deoxynivalenol (DON) and zearalenone (ZEN). Toxins, 17, 146 p. DOI:10.3390/toxins17030146.
  52. Papatsiros, V.G., Eliopoulos, C., Voulgar akis, N., Arapoglou, D., Riahi, I., Sadurní, M., Papakonstantinou, G.I. (2023). Effects of a multi-component mycotoxin-detoxifying agent on oxidative stress, health and performance of sows. Toxins, 15, 580 p. DOI:10.3390/toxins15090580.
  53. Brezvyn, O., Rudyk, G., Guta, Z. (2018). Influence of HammecoTox and Zeolitis on morphological and biochemical indicators of rat’s blood under conditions of experimental fumonisin toxicosis. Ukrainian Journal of Veterinary and Agricultural Sciences, 1 (1), pp. 23–29. DOI:10.32718/ujvas1-1.04.
ДолученняРозмір
PDF icon vovkotrub_1_2026_.pdf1.09 МБ
Науковий вісник ветеринарної медицини № 1'2026