Ви є тут
Концентрація С-реактивного білка та гаптоглобіну у корів хворих на субклінічний ендометрит
Важливою складовою імунної відповіді організму є білки гострої фази, які синтезуються у гепатоцитах. Основна їхня функція полягає у реакції на запальний процес, травми, інфекції, стрес, неоплазію. Стимулятором синтезу білків гострої фази є прозапальні цитокіни, що активуються на дію патогенних мікроорганізмів. У статті подано результати зміни кон-центрації С-реактивного білка та гаптоглобіну у корів на субклінічний ендометрит порівняно з здоровими коровами. Дослідження проводили у ННВЦ «Комарнівський» Городоцького району Львівської області на двох групах корів української чорно-рябої молочної породи віком від 4 до 7 ро-ків. Контрольна група включала двадцять (n=20) клінічно здорових корів. До експериментальної групи входило двадцять (n=20) корів із субклінічним ендометритом. Згідно з отриманими результатами констатуємо, що у хворих на субклінічний ендометрит корів коцентрація C-реактивного білка та гаптоглобіну вірогідно зростала (Р ˂ 0,001) порівняно з контрольною групою. Дослідження показує, що визначення С-реактивного білка та гаптоглобіну може бути важливим діагностичним маркером за постановки діагнозу на субклінічний ендометрит у корів.
Ключові слова: білки гострої фази, С-реактивний білок, гаптоглобін, субклінічний ендометрит, корова, матка.
1. Заходим М. В. Сучасний стан і тенденції розвитку молочного скотарства в Україні. Інноваційна економіка. 2016. № 1–2. С. 53–59.
2. Стравський Я. С., Стефаник В. Ю., Кости-шин Є. Є. Етіологія, патогенез, діагностика та методи лікування корів, хворих на метрит. Науково-технічний бюлетень Інституту біології тварин і Державного науково-дослідного контрольного інституту ветпрепаратів та кормових добавок. 2015. № 1. С. 257–264.
3. Hussain A. M. Bovine uterine defense mechanisms: a review. J. Vet. Med. B. 1989. Vol. 36. P. 641–651. Doi:https:// doi.org/10.1111/j.1439-0450.1989.tb00657.x
4. The effect of a single administration of cephapirin or cloprostenol on the reproductive performance of dairy cows with subclinical endometritis/ R. Kasimanickama et al. Theriogenology. 2005. Vol. 63. P. 818–830. Doi: https://doi. org/10.1016/j.theriogenology.2004.05.002
5. Barlund C.S., Carruthers T.D., Waldner C.L., Palmer C.W. A comparison of diagnostic techniques for postpartum endometritis in dairy cattle. Theriogenology. 2008. 69. P. 714–723. Doi:https://doi.org/10.1016/j. theriogenology.2007.12.005
6. LeBlanc S. Postpartum uterine disease and dairy herd reproductive performance: A review. The Veterinary Journal. 2008. 176. P. 102–114. Doi:https://doi.org/10.1016/j. tvjl.2007.12.019
7. Physiology and endocrinology symposium: Uterine infection: Linking infection and innate immunity with infertility in the high-producing dairy cow/ J.J. Bromfield et al. J. Anim. Sci. 2015. 93. P. 2021–2033. Doi:https://doi. org/10.2527/jas.2014-8496
8. Metritis in dairy cows: Risk factors and reproductive performance/ M.J. Giuliodori et al. J. Dairy Sci. 2013. 96. P. 3621–3631. Doi:https://doi.org/10.3168/jds.2012-5922
9. Sheldon I.M., Lewis G. S., LeBlanc S., Gilbert R.O. Defining postpartum uterine disease in cattle. Theriogenology. 2006. 65. P. 1516–1530. Doi:https://doi.org/10.1016/j. theriogenology. 2005.08.021
10. Brodzki P., Kostro K., Krakowski L., Marczuk J. Inflammatory cytokine and acute phase protein concentrations in the peripheral blood and uterine washings of cows with subclinical endometritis in the late postpartum period. Vet Res Commun. 2015. 39. Р. 143–149. Doi:https://doi.org/10.1007/ s11259-015-9635-4
11. Fourichon C., Seegers H., Malher X. Effect of disease on reproduction in the dairy cow: a meta-analysis. Theriogenology. 2000. 53. P. 1729–1759. Doi:https://doi. org/10.1016/S0093-691X(00)00311-3
12. Endometrial cytology and ultrasonography for the detection of subclinical endometritis in postpartum dairy cows/ R. Kasimanickama et al. Theriogenology. 2004. 62. P. 9–23. Doi:https://doi.org/10.1016/j.theriogenology. 2003.03.001
13. Defining and diagnosing postpartum clinical endometritis and its impact on reproductive performance in dairy cows/ S. LeBlanc et al. J Dairy Sci. 2002. 85. P. 2223–2236. Doi:https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(02)74302-6
14. Subcutaneous immunization with inactivated bacterial components and purified protein of Escherichia coli, Fusobacterium necrophorum and Trueperella pyogenes prevents puerperal metritis in Holstein dairy cows/
V.S. Machado et al. PLoS One. 2014. 9. P. 917–934. Doi:https://doi.org/10.1371/journal.pone.0091734
15. Sahoo S., Mohanty D.N., Das S., Padhy A. Effect of uterine immunomodulation on hematobiochemical parameters in cyclic non-breeding cows. Veterinary World. 2014. 7. P. 816–820. Doi:https://doi.org/10.14202/ vetworld.2014.816-820
16. Dynamics of uterine infections with Escherichia coli, Streptococcus uberis and Trueperella pyogenes in post-partum dairy cows and their association with clinical endometritis/ K. Wagener et al. The Veterinary Journal. 2014. 202.
P. 527–532. Doi:https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2014.08.023
17. Draft Genome Sequence of Escherichia coli MS499, Isolated from the Infected Uterus of a Postpartum Cow with Metritis/ R.J. Goldstone et al. Genome Announcements. 2014. 2. e00217-14. Doi:https://doi.org/10.1128/genomeA.00217-14
18. Haziak K., Herman A.P., Tomaszewska-Zaremba D. Effects of central injection of anti-LPS antibody and blockade of TLR4 on GnRH/LH secretion during immunological stress in anestrous ewes. Mediators of inflammation. 2014. P. 1–10. Doi:https://doi.org/10.1155/2014/867170
19. Exposure to endotoxin during estrus alters the timing of ovulation and hormonal concentrations in cows/ Y. Lavon et al. Theriogenology. 2008. 70. P. 956–967. Doi:https://doi. org/10.1016/j.theriogenology.2008.05.058
20. Dynamics of bacteriologic and cytologic changes in the uterus of postpartum dairy cows/ I. Prunner et al. Theriogenology. 2014. 82. Р. 1316–1322. Doi:https://doi. org/10.1016/j.theriogenology.2014.08.018
21. Suzuki C., Yoshioka K., Iwamura S., Hirose H. Endotoxin induces delayed ovulation following endocrine aberration during the proestrous phase in Holstein heifers. Domestic animal endocrinology. 2001. 20. Р. 267–278. Doi:https://doi.org/10.1016/S0739-7240(01)00098-4
22. Serum amyloid A and haptoglobin levels in crossbred cows with endometritis following different therapy/ S.S. Biswal et al. Veterinary World. 2014. 7. Р. 1066–1070. Doi:https://doi.org/10.14202/vetworld.2014.1066-1070
23. Cray C., Zaias J., Altman N.H. Acute Phase Response in Animals: A Review. Comparative Medicine. 2009. 59. P. 517–526.
24. Determination of ceruloplasmin, some other acute phase proteins, and biochemical parameters in cows with endometritis/ S. Kaya et al. Veterinary World. 2016. 9. Р. 1056–1062.
25. Jones G.E., Mould D.L. Adaptated of the guaiacol (peroxidase) test for haptoglobins to a microtitration plate system. Res Vet Sei. 1984. 37. Р. 87–92. PMID: 6089287
26. Defining postpartum uterine disease and the mechanisms of infection and immunity in the female reproductive tract in cattle/ I.M. Sheldon et al. Biology of reproduction. 2009. 81. Р. 1025–1032. Doi:https://doi. org/10.1095/biolreprod. 109.077370
27. Acute phase protein concentration and metabolic status affect the outcome of treatment in cows with clinical and subclinical endometritis/ M. Heidarpour et al. The Veterinary record. 2012. 171. 219 p. Doi:https://doi.org/10.1136/vr.100947
28. Acute phase proteins and variables of protein metabolism in dairy cows during the pre- and postpartial period/ C.S. Tothova et al. Acta Vet Brno. 2008. 77. Р. 51–55. Doi:https://doi.org/10.2754/avb200877010051
29. Turner M.L., Healey G.D., Sheldon I.M. Immunity and inflammation in the uterus. Reproduction in Domestic Animals. 2012. 47. Р. 402–409. Doi:https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2012.02104.x
30. Serum C-reactive protein in dairy herds/ W.C. Lee et al. The Canadian Journal of Veterinary Research. 2003. 67. P. 102–107. PMC227036
31. Власенко С. А., Рубленко М. В. Продукція оксиду азоту та білків гострої фази за гестаційного процесу, ме-триту і ортопедичної патології у корів. Біологія тварин. 2012. 14. C. 361–369.
32. Evaluation of acute phase proteins in clinically healthy dairy cows in perinatal period and during lactation/B. Dębski et al. Polish Journal of Veterinary Sciences. 2016. 19. P. 519–523. Doi:https://doi.org/10.1515/pjvs-2016-0065
33. Murata H., Shimada N., Yoshioka M. Current research on acute phase proteins in veterinary diagnosis: an overview. Veterinary Journal. 2004. 168. P. 28–40. Doi:https:// doi.org/10.1016/S1090-0233(03)00119-9
34. Sheldon I.M., Noakes D.E., Rycroft A., Dobson H. Acute phase protein responses to uterine bacterial contamination in caftle after calving. Veterinary Record. 2001. 148. Р. 172–175. Doi:https://doi.org/10.1136/vr.148.6.172
| Долучення | Розмір |
|---|---|
 vetvisnyk_-2-2020-007-013.pdf | 645.49 КБ |