Ви є тут
RELIABLE DIAGNOSIS OF TRICHINOSIS
З огляду на вимоги Міжнародного епізоотичного бюро (МЕБ), Міжнародної комісії з трихінельозу, а також складну ендемічну ситуацію в Україні щодо трихінельозної інвазії, першочерговим завданням є розробка і впровадження в практику ветеринарної медицини новітніх методів діагностики.
Експериментально відтворено низьку (200 личинок на голову), середню (1000 личинок) та високу (20000 личинок) інвазію личинками Trichinella spiralis у свиней, що підтверджено їх виявленням в м'язах діафрагми всіх експериментальних тварин після евтаназії, за допомогою методів компресоріумної трихінелоскопії і перетравлення проб м'язів в штучному шлунковому соку.
Отримано панель сироваток крові від свиней, експериментально заражених личинками Trichinella spiralis в динаміці інвазії, починаючи з 5 до 63 діб після зараження.
За результатами дослідження встановлено, що перетравлення проб м'язів в штучному шлунковому соку з використанням «Набору діагностичного для ідентифікації личинок Trichinella spiralis методом перетравлення проб м'язів» є більш чутливим методом післязабійної діагностики в порівнянні з методом компресоріумної трихінелоскопії.
Встановлено, що «Універсальний діагностичний набір «Епіскрін АВ» (в комплектації для індивідуальної експрес-діагностики трихінельозу тварин) має високу чутливість і дозволяє виявляти антитіла до Trichinella spiralis
у свиней на ранній стадії інвазії, починаючи з 8-17 діб після зараження. Методами компресоріумної трихінелоскопії і перетравлення проб м'язів в штучному шлунковому соку неможливо виявити личинок трихінел в зазначені терміни.
За допомогою «Тест-системи діагностичної імуноферментної «Trichineliso test АВ», антитіла до Trichinella spiralis в сироватці крові експериментально заражених свиней виявлено на 8-22 добу після зараження, що свідчить про досить високий рівень чутливості діагностикума.
«Універсальний діагностичний набір «Епіскрін АВ» дозволяє виявляти антитіла в міжм'язовій рідині, а також крові з порожнини серця тварин, отриманих після їх забою. Цей набір є експрес тестом, яким можна проводити прижиттєву і/або послязабійну діагностику трихінельозу свиней протягом 15 хв, практично в «польових умовах».
Ключові слова: трихінельозна інвазія, діагностика, компресоріумна трихінелоскопія, пепсинізація, ІХА, ІФА.
https://orcid.org/0000-0003-4856-30401. Artemenko, J.G., Artemenko, L.P., Nebeschuk, O.D., Litvinenko, A.P. (2007). Monitoring studies for trichinosis in Ukraine. Vet. medicine, Kharkiv, Vol. 88, pp. 156–158.
2. Artemenko, Y.G., Artemenko, L.P. (2005). The current diagnosis of trichinosis of pigs in Ukraine. Vet. Medicine Ukraine, № 1, pp. 23–25.
3. Napisanova, L.A., Sivkova, T.N., Berezhko, V.K. (2002). Using the dot-ELISA in diagnosis of helminth infections. Proceedings of All-Russia, Inst helminthology name KI Scriabin, Moscow, V. 38, pp. 206–220.
4. Gamble, H.R., Anderson, W.R., Graham, C.E., Murrell, K.D. (1983). Diagnosis of swine trichinosis by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) using an excretory-secretory antigen. Vet. Parasitol, Vol. 13, pp. 349–361.
5. Artemenko, Y.G., Artemenko, L.P., Nebeschuk, O.D. (200). Main types of combat trichinellosis in Ukraine at the present stage. Bulletin Bilotserkiv. state agrar. univ: Сorpus sciences jobs, Bila Tserkva, Vol. 39, pp. 51–56.
6. Ayong, L.S., Tume, C.B., Wembe, F.E. et al. (2005). Development and evaluation of an antigen detection dipstick assay for the diagnosis of human onchocerciasis. Trap. Med. Int. Health, Vol. 10, pp. 228–233.
7. Posthuma-Trumpie, G.A., Korf, J., Amerongen, Avan (2008). Development of a competitive lateral flow immunoassay for progesterone: influence of coating conjugates and buffer components. Anal. Bioanal. Chem, Vol. 392, pp. 1215–1223.
8. Delmulle, B.S., De Saeger, S.M., Sibanda, L. et al. (2005.) Development of an immunoassay-based lateral flow dipstick for the rapid detection of aflatoxin B1 in pig fe. J. Agric. Food. Chem, Vol. 53, pp. 3364–3368.
9. Gamble, H.R., Bessonov, A.S. , Cuperlovic, К. et al. (2000). International commission on trichinellosis: recommendations on methods for the control of Trichinella in domestic and wild animals intended for human consumption. Vet. Parasitol, Vol. 93, pp. 393–408.
10. Kapel, C.M.O., Gamble, H.R. (2000). Infectivity, persistence, and antibody response to domestic and sylvatic Trichinella spp. in experimentally infected pigs. International Journal for Parasitology, Vol. 30, pp. 215–221.
| Долучення | Розмір |
|---|---|
 nvvm_1_2017_p111-117_nebeschuk.pdf | 1.91 МБ |